SANGRE PATOGENIA Bacteriemia: hemocultivo. Septicemia o sepsis:
Shock séptico Puertas de entrada:
Fiebre o hipotermia Taquicardia Leucocitosis Tracto genitourinario (25 %). Tracto respiratorio (20 %). Abscesos (10%). Heridas quirúrgicas infectadas (5%). Tracto biliar (5%).
MICROORGANISMOS -
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Bacilos gramnegativos: Enterobacteriaceae y Pseudomonas. Staphylococcus epidermidis y otros estafilococos coagulasa negativos. Staphylococcus aureus. Nosocomiales: bacterias resistentes a los antibióticos (E. coli, Serratia marcescens, Enterobacter cloacae,Pseudomonas aeruginosa, Stenotrophomonas maltophilia y Acinetobacter baumannii). Corynebacterium jeikeium. Estreptococos grupo viridans. Streptococcus bovis. Enterococcus faecalis. Streptococcus pneumoniae. Haemophilus influenzae y H. parainfluenzae. Listeria monocytogenes. Bacterias anaerobias: Bacteroides fragilis, Clostridium perfringens y C. septicum. Otras bacterias: Campylobacter spp, Alcaligenes spp, Cardiobacterium hominis, Yersinia pestis, Francisella tularensis y otros.
TIPOS DE BACTERIEMIAS -
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Primarias: Sin foco conocido. Sépticas: Con un origen determinado ( neumonía→ neumococo; gastroenteritis→ Salmonella; pielonefritis→E.coli; prótesis→S.epidermidis). Monomicrobianas o polimicrobianas. Fungemias.
PRONOSTICO -
Elevada mortalidad. Según la edad. Inmunosuprimidos y oncológicos, peor pronóstico.
CULTIVO DE SANGRE: HEMOCULTIVO. Toma de muestra. Volumen de sangre: Proporción de sangre a medio de cultivo: 1/10. Adultos: 10-20 ml/ extracción → 5 ml/frasco 50 ml 10 ml/frasco 100ml. Niños: 2-5 ml/extracción. - Número e intervalo de recogida de muestra. 2 o tres tomas a intervalos no inferiores a 1 hora. Terapia antimicrobiana: extracción justo antes de la administración del antibiótico. - Transporte: Envío inmediato. Mantener a 30-37ºC, si no es posible Tª ambiente (nunca refrigerar). - Medios de cultivo: Caldos enriquecidos con sustancias que faciliten en crecimiento de bacterias con requerimientos nutritivos y con sustancias para inhibir factores que se encuentran en la sangre y dificulten el crecimiento bacteriano. SPS (polianetol sulfonato sódico): - Inhibe actividad bactericida del suero. - Neutraliza algunos antibióticos. - Inactiva el complemento. - Neutraliza lisozimas. 2% gelatina. - Medios utilizados: 1. Medios líquidos: TSB, BHI, Columbia, Schaedler. 2. Medios bifásicos: recomendados para hongos y Brucella. - frascos Castañeda. - septi-Check. 3. Lisis-centrifugacion: - Isolator, contiene saponina, propilenglicol, SPS, fluorinert y EDTA. 4. Medios para aislamiento de microorganismos después de terapia antibiótica. - Sistemas de retirada de antimicrobianos. - Adición de penicilinasas. 5. Medios utilizados en sistemas automatizados:Ventajas→ Agitación y Tiempo. - Bact T/Alert (Organon Teknika). - Bactec (Becton Dickinson). -
PROCESAMIENTO DE LA MUESTRA -
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Dos frascos por toma: una aerobia y otra anaerobia. Incubar a 35ºC, los frascos aerobios en agitación. Frascos positivos detectados por cualquier procedimiento: - Aerobios: Gram y resiembra en A. Sangre y A. Chocolate. - Anaerobios: Gram y resiembra en A. Sangre aerobiosis y A. Sangre anaerobiosis. - Si en la tinción de Gram se observan microorganismos informar inmediatamente. - Placas aerobias incubar 24 h; placas anaerobias incubar 48 h. - Si crecimiento en las placas proceder a identificación y antibiograma. - Si no existe crecimiento en las placas y no se observa nada en la tinción de Gram volver a reincubar los frascos en las mismas condiciones. Si a los 10 días no hay crecimiento en los frascos se realiza un pase ciego: - Frascos aerobios: A. Sangre y A. Chocolate. - Frascos anaerobios: A. Sangre anaerobiosis. - Si se sospecha algún microorganismo de crecimiento lento incubar los frascos más días. Por ejemplo Brucella → 30 días los frascos aerobios.
INTERPRETACION DE LOS RESULTADOS -
Si tras pase ciego no hay crecimiento en las placas informar el resultado del hemocultivo como negativo o sea no desarrollo bacteriano a los X días.
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Si desarrollo de patógeno reconocido (meningococo, neumococo) el diagnóstico es inapelable: Informar “Desarrollo de ..... en Y tomas” junto con el antibiograma.
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El problema es el aislamiento de microorganismos que forman parte de la microbiota normal de la piel, será necesario indicar el número de tomas donde ha habido crecimiento. - Estafilococos coagulasa negativos: si crece en todas las tomas → valorar; si no considerar contaminante. - Micrococcus spp, generalmente considerar contaminación. - Propionibacterium acnes: igual que SCN.