Toma De Muestra En Laboratorio

  • October 2019
  • PDF

This document was uploaded by user and they confirmed that they have the permission to share it. If you are author or own the copyright of this book, please report to us by using this DMCA report form. Report DMCA


Overview

Download & View Toma De Muestra En Laboratorio as PDF for free.

More details

  • Words: 1,429
  • Pages: 49
UNFV - FTM

TOMA DE MUESTRA

Lic. TM. Ferreyra Hurtado, Christian Y.

TOMA DE MUESTRA • DEFINICIÓN: Procedimiento especializado que consiste en la obtención de uno o varios especimenes biológicos con el fin de encontrar la causa o factores que afectan la salud.

COMO EL PACIENTE LLEGA AL SERVICIO DE LABORATORIO CLINICO PACIENTE

MEDICO

INTERROGATORIO EXPLORACION OBJETIVA EXPLORACION COMPLEMENTARIA

LABORATORIO CLINICO

¿QUE ESPERA EL PACIENTE DEL LABORATORIO? • TRATO PERSONALIZADO • SENTIR SEGURIDAD • EXAMENES NECESARIOS • INSTRUCCIONES CHARLAS Y PRECISAS • EXAMENES DE BAJO COSTO

Trato al Paciente Saludar al paciente Verificar la identidad del paciente Interrogar al paciente para verificar que ha cumplido con los requisitos para la toma de muestra. Explicar el procedimiento al paciente y/o familiar. Hacer firmar su consentimiento Realizar la técnica correcta de la venopunción (evitar hemólisis o contaminación) . Bioseguridad.

¿QUE ESPERA EL MEDICO DEL LABORATORIO? •

RESULTADOS CONFIABLES



INFORMACIÓN OPORTUNA



PERSONAL CALIFICADO



TECNICAS ADECUADAS Y MODERNAS

SISTEMAS DE CICLO COMPLETO DE ATENCION AL USUARIO EN EL SERVICIO DE LABORATORIO

PACIENTE

PETITORIO

TTO DEL PACIENTE

RECOLECCION DE MUESTRA

TRANSPORTE

RESULTADOS

CIRCULACIÓN DE DATOS

ANALISIS DE LABORATORIO

FASES EN LA REALIZACION DE UN EXAMEN

FASE PRE ANALITICA FASE ANALITICA FASE POST-ANALITICA

FASE PRE-ANALITICA

Se los

debe

normar

esquemas

transporte

y

y

dar

de

cumplimiento

toma

conservacion

muestras previo a su analisis.

de

rigido

muestra, de

las

a

FASE PRE-ANALITICA Refrigeración o congelación en deacuerdo al espécimen.

IDENTIFICACIÓN PACIENTE

RECOLECCIÓN MUESTRA

PREPARACIÓN PREVIA DE LA MUESTRA

Centrifugación, inactivación, des proteinización, etc--procesamiento propiamente dicho

CONSERVACIÓN ALMACENAMIENTO

IDENTIFICACIÓN DEL PACIENTE



Identifíquelo ud. Mismo al paciente es de gran importancia.



Al paciente que se le tomara la muestra debe ser la persona que corresponda sus datos en la solicitud.



Pregunte ud. Al paciente sus nombres y apellidos, edad, FUR, etc

Casos especiales??? • Paciente inconsciente, que no pueden dar información sobre su identidad, se corrobora los datos con los familiares o enfermera. • Si el paciente es o RN. Verificar la tarjeta de identidad, brazalete, y con el personal asistencial. • Pacientes que no es identificado se registra como nnn 1…, 2, colocar la hora de llegada, sexo, edad aproximada y datos adicionales.

INSTRUCCIONES • Educar y preparar adecuadamente al paciente. • Si requiere estar en ayunas o post prandial. • Considerar los hábitos del paciente que no puedan influir en el resultado como son ejercicios y medicamentos. • Hora que debe presentarse al laboratorio y que tiempo va durar el examen, cuando obtenga su resultado. • Elaborar cartillas que den información y requisitos previos. • A la toma de muestra, hágalo leer y preguntarle si existe alguna duda o interrogación.

Variaciones fisiológicas Ejercicios La actividad muscular tiene efectos, sobre diversos parámetros químicos, clínicos y se relaciona con la intensidad de la actividad. Ejercicio moderado : Glucemia Piruvato y lactato (incremento de la act. Metabólica del músculo esquelético). Ph arterial, Pco2 Ligera del colesterol y triglicéridos

EJERCICIOS ENERGICOS GLUCOSA LACTATO PROTEINAS PLASMATICAS CK

AYUNO > 24 hrs 72 hrs

De bilirrubina sérica de glucosa 45 mg/dl Trigliceridos, glicerol y ac. Grasos libres, colesterol total sin modification

ETANOL • • •

Lactato, urato, trigliceridos Abuso cronico del alcohol: colesterol HDL, Uratos, glutamil transferasa, volumen corpuscular medio (vcm)

TABACO •

El efecto depende del numero de cigarrillos fumados y la cantidad de humo inhalado. • La nicotina estimula la medula suprarrenal: Adrenalina, catecolaminas y metabolitos orina. Del lactato de glucosa hormona de crecimiento Colesterol, trigliceridos (contrariamente) De hdl. Colesterol. Piruvato

Nicotina • • • • •

La nicotina es un estimulante potente de la secreción del jugo gástrico: Aumenta el volumen y secreción del ácido Disminuye de bicarbonato, IgG, IgA, IgM. Aumenta de IgE. Disminuye de vitamina B12

Farmacos • Las interferencias por fármacos son de dos tipos - Efectos fisiológicos in vivo del fármaco y sus metabolitos. In vivo Manitol fenobarbital Fenobarbital Al(OH)3 Furosamina

na de bilirrubina ck fosforo cloro

Farmacos •

- Efecto in Vitro, son la consecuencia de algunas propiedades físicas o químicas que interfieren con la prueba. In vitro Ac. Ascórbico Ac. Ascórbico Metamizol Teofilina Teofilina

Bilirrubina Ácido úrico Glucosa LDH Ac. Úrico

Postura •

Las muestras de sangre debe obtenerse en individuos en posición sentada o supina.



Cuando el paciente pasa de la posición supina a ortostatica se produce la salida de agua y sustancias filtrables desde el espacio intravascular al liquido intersticial. Del espacio extra celular.



Las sustancias no filtrables como las proteínas , elementos celulares, en personas sanas el incremento es 8 – 10% Aumenta su concentración : albúmina, proteínas totales calcio, bilirrubina colesterol triglicéridos, Hb-Hto.

Pacientes hospitalizados e inmovilizados Los volumenes del plasma y líquidos extracelular disminuyen Hto hasta 10 % en 4 días. de proteínas T Y albúmina (retención de liquido). CK por la liberación del músculo esquelético. K debido a la reducción de la masa muscular esquelética.

Precauciones: No se debe tomar la muestra de sangre: •

De una área con hematoma.



De un brazo con fístula o malformación arteriovenosa.



Por encima de un sitio donde hay líquidos endovenosos.



Del mismo lado donde un paciente ha tenido una mastectomía.



Para una muestra capilar no ejecutar una punción en un dedo o talón que este magullado, herido, frío, edematoso o cianótico.

Materiales para toma de muestra Sanguinea  Agujas • • •

Aguja hipodérmica nº 20 x 1 Aguja vacutainer nº 20 x1 Kit de mariposa

 Soporte vacuteiner  Jeringa descartable  Tubos Vacuteiner (con o sin anticoagulantes).

        

Torniquetes : Guantes . Torundas de algodón estériles. Alcohol isopropilico al 70% (v/v), alcohol70% yodado al1%. Contenedor de dispositivos corto-punzantes. Esparadrapo. Contenedor de deshechos peligrosos. Gradilla de tubos. Lápiz marcador.

Elección de la Vena •

Elegir una apropiada vena es la clave del éxito



Tener en cuenta:

     

La localización Tamaño Tonicidad Calibre Verificar su trayecto Buen estado de conservación

VENOPUNCIÓN USANDO JERINGAS

VENOPUNCIÓN USANDO UN SISTEMAS DE INFUSIÓN CONECTADO A UNA JERINGA

Sangre Arterial (AGA) • • • • • • • • •

La muestra debe ser tomada de la arteria radial, cubital (1ero), braquial (2do), Inguinal (último de los casos). La sangre debe fluir libremente o ser aspirada en forma continua. La extracción no debe ser > de 15segundos. La jeringa no debe contener espacios, burbujas de aire Si se usa heparina de litio el volumen debe ser inferior al 2% del total de la sangre (20 ul/ml) La jeringa debe estar completamente cerrada. Evitar la contaminación con el aire. Adultos y niños .........................1.0 ml Neonatos y lactantes.............0.5 ml

3

1

2

• La muestra debe ser inmediatamente llevada al laboratorio--- < de los 15`de tomada la Mx.

Técnica de la toma de Mx

RECOLECCION DE SANGRE Punción en el dedo Debe escoger la mano menos dominante Use la superficie palmar de la falange distal del dedo anular (4to dedo). Calentar la piel tº no >42ºC. Sostener la lanceta en un ángulo de 90º .

Punción de pulpejo del dedo y del talón del pie en Neonatos

PUNCION DEL TALON DEL PIE

LA PROFUNDIDAD DE LA PUNCIÓN NO DEBE SER MAS DE 2.5 mm

Causas de rechazo de la MX

Identificación incorrecta. Volúmenes de sangre inadecuados. Utilización de tubos de recolección no especifico. Hemólisis . Transporte inapropiado. Interferentes (sueros ictéridos, lipémicos, contaminados).

TRANSPORTE •

Las muestras deben enviarse en un recipiente que sean resistentes ala filtración golpes y cambios de presión.



Las muestras deberán empaquetarse para resistir las condiciones ambientales.



El transporte de la sangre, la orina y otros líquidos corporales y tejidos deben recibirse en el laboratorio en 45 minutos desde la recogida.



Evitar la hemólisis y la luz directa.



Todos los especimenes deben de transportarse en forma cuidadosa y conveniente para evitar riesgo o contaminación de lo mismo.

PROCESADO DE LOS ESPECIMENES Fase de centrifugación • La centrifugación de sangre coagulada para obtener suero se debe realizar después de 20 a 30 minutos de obtenida la muestra • Se centrifuga la muestra durante 10 minutos a 2500 R.P.M. • La sangre con anticoagulante se puede centrifugar inmediatamente después de la toma de muestra. Fase de procesamiento en Equipos automatizados o manual

CONSERVACIÓN •

En los especimenes se produce una multitud de alteraciones, después de haberlos retirado del paciente.



El crecimiento de bacterias y la actividad enzimático pueden hacer variar drásticamente el valor de los componentes sanguíneos.



La refrigeración o congelación del espécimen, retrasar estas reacciones degradantes.

Refrigeración 4ºc A 8ºc Congelación -20ºc

TOMADE DE MUESTRA MUESTRA TOMA

Lic. TM. Ferreyra Hurtado, Christian Y.

Related Documents