Plagas Del Papayo

INTRODUCCIÓN Los insectos que afectan el cultivo de papayo pueden ocasionarle pérdidas desde un 5 hasta un 100 % si no son controlados a tiempo. Algunos de ellos no viven en la planta, sino que se les encuentra en la maleza y sólo ocasionalmente, se alimentan en el papayo (áfidos y trips). Los nemátodos encuentran en las raíces del papayo un huésped perfecto. Desafortunadamente, contrario a los problemas por plagas antes mencionados que con prácticas agrícolas y agroquímicos se evitan o controlan, su principal problema es que no tiene ningún mecanismo de defensa contra el virus de la mancha anular, el cual una vez que infecta a la planta se propaga rápidamente, por medio de vectores del orden Homóptera. El control químico en papayo requiere de extremo cuidado, ya que algunos insecticidas pueden ocasionar síntomas de fitotoxicidad que semejan a los causados por las enfermedades virales. El concepto de plaga implica un criterio económico. La detección de insectos, ácaros y nemátodos en las plantas no indica que constituyan plagas de importancia económica, mientras no reduzcan la cantidad, calidad de las cosechas o ambas. Este aspecto debe de tenerse presente al realizar aplicaciones indiscriminadas de productos agrouímicos, que no resultan económicos y destruyen el equilibrio natural existente entre las plagas y sus enemigos naturales, lo que trae como consecuencia el rápido incremento de ellas y, por consiguiente, la reducción de los rendimientos. En el cultivo del papayo muchos insectos pueden infestar los tallos, hojas, frutos y raíces, pero pocos causan un verdadero daño económico como los que transmiten enfermedades virales y micoplasmáticas que causan el rápido deterioro de las plantaciones. A continuación se relacionan los agentes más importantes que afectan al cultivo del papayo en México. Las plagas que más pueden perjudicar al fruto del papayo son la araña roja, los nemátodos, la mosca Toxotrypana curvicauda,, la mosca de la fruta del Mediterráneo (Ceratitis capitata) y su control es sencillo ya que basta con destruir y enterrar los frutos afectados y el empleo de pulverizaciones de emulsiones de ésteres fosfóricos. También destaca el pulgón del melocotonero (Myzus persicae), que es transmisor del virus del mosaico. CLASIFICACIÓN DE PLAGAS Las plagas del papayo son muchas y variadas, por lo cual para su estudio dividiremos esta clasificación en: Grupo I.- Ácaros que atacan al papayo.- En este grupo se incluyen a las arañas rojas o ácaros rojos y el ácaro blanco o araña blanca. Grupo II.- Insectos que atacan al papayo: que a su vez se subdivirán en subgrupos denominados: IAF) Insectos que atacan el follaje (hojas, pecíolos y parte apical).- Aquí se encuentran los insectos chupadores como chicharritas, trips. mosquitas blancas, chicharritas y pulgones, además de insectos masticadores como los gusanos defoliadores y la Doradilla (Diabrótica balteata). IAT) Insectos que atacan los tallos (taladradores del tallo).- Aquí encontramos el Rinchosporum palmarum que barrena los tallos ocasionando la muerte de las plantas y los géneros Homolalpia sp. IAFF) Insectos que atacan las flores y frutos.- Aquí encontramos a los diferentes géneros de moscas de la fruta, a los gusanos del género Heliothis spp. que atacan flores y frutitos en desarrollo, Erinnys ello y Manduca sexta, así como y a la mosca de la papaya (T. curvicauda) que ataca a los frutos desde el tamaño de 10 cm de longitud hasta a los frutos cercanos a la madurez.

IAR) Insectos que atacan las raíces.- Aquí encontramos a los diferentes plagas del suelo como el gusano alfiler y la gallina ciega. Grupo 3.- Nemátodos que atacan al papayo: aquí tenemos diferentes géneros como de nemátodos, entre los más importantes se tiene a los géneros: Meloidogyne spp., Pratylenchus spp. y Rotylenchus spp.

GRUPO I.- ACAROS QUE ATACAN AL PAPAYO ANTECEDENTES Los adultos y ninfas succionan la savia de las células, siendo el principal daño que producen, inicialmente en las hojas inferiores. Provocan un punteado amarillento en las hojas, volviéndose más obscuro si la infestación va en aumento. Causan defoliación prematura, reduciendo el vigor del árbol y los frutos pierden valor comercial. Se observan en el envés las colonias y las telarañas que tejen. Algunos ácaros que se reportan para el cultivo del papayo (C. papaya L.) se tienen en el siguiente cuadro, entre los que destacan en orden de importancia el ácaro rojo y el ácaro cristalino. Tipos

Área afectada

Género y especie

Ácaro blanco

Envés de hojas nuevas

Polyphagotarsonemus latus

de plántulas Ácaro rojo y ácaro negro

Fruta

Brevipalpus phoenicis

Ácaros tuquerélidos

Tallos de plantas viejas

Tuckerella ornata T. pavoniformis

Envés de hojas maduras

Tetranichus cinnabarinus

Ácaro rojo de los cítricos

Parte superior de hojas maduras

Panonichus citri

Ácaro del cítrico de Texas

Parte superior de hojas maduras

Eutetranychus banksi

Ácaro araña de Carmen (Araña roja)

Dos especies son de especial importancia en el cultivo del papayo: la araña cristalina (P. latus) y la arañaroja (T. cinnabarinus) que se describirán a continuación. 1) ACARO BLANCO O ARAÑA CRISTALINA (Polyphagotarsenomus latus) Banks. 1.1) HOSPEDEROS Estas arañas atacan muchos cultivos tanto hortícolas como frutales incluyendo melones, crisantemos, calabaza, pepino, guayaba, macadamia, mango, papaya y jitomates. Los restos de estos cultivos sirven de reservorios entre los ciclos agrícolas de cada cultivo. En temperaturas

de áreas tropicales y subtropicales éste ácaro es una plaga de invernaderos. (Brown y Jones, 1983). 1.2) DISTRIBUCION Ésta araña tiene distribución cosmopolita. Se tiene documentado su presencia en Australia, Asia, África, Norteamérica, Sudamérica y las Islas del Pacífico. Los países en donde se encuentran reportadas son: Los EE.UU., México, Islas Bermudas, Brasil, China, Las Guyanas, Islas Fidji, Malasia, Islas Marianas, Pakistán, Papua, Nueva Guinea, Filipinas, Sri Lanka, Taiwán, etc. (Waterhouse y Norris, 1987). En la actualidad se encuentra en todas las islas Hawaianas. 1.3) DAÑOS Esta araña es considerada como una de las mayores plagas a baja altura sobre el nivel del mar en los meses de verano. Las arañas afectan las hojas por medio de que se alimentan a través de su aparato bucal atravesando las células vegetales y absorben la savia de éstas (Waterhouse y Norris, 1987). Esto trae como consecuencia la reducción en la actividad fotosintética y provocan una inestabilidad en el balance hídrico. Es importante mencionar que el P. latus ataca la parte apical o terminal de las plantas del papayo, prefiriéndolas debido a sus hábitos alimenticios de buscar tejidos nuevos y en crecimiento, a diferencia del ácaro rojo o T. cinabarinus que prefiere las hojas basales o maduras del follaje del papayo. Sin embargo, se ha observado el ataque del ácaro blanco también en los rebrotes, chupones y retoños nuevos de la planta, de ahí la importancia del saneamiento de los huertos en producción (poda de rebrotes). El ácaro blanco es sumamente nocivo pues ataca las hojas del cogollo de plantas jóvenes y adultas. Provoca con su alimentación pérdida de clorofila, debilitando al árbol e impidiendo su crecimiento. Cuando hay un ataque, desde lejos se observan las hileras afectadas, pues éstas presentan un color verde pálido, contrastando con el resto de la plantación. Una vez que aparecen, su dispersión es muy rápida, pues son muy móviles. Ocasionan además daños en las hojas terminales y en los botones florales que llegan a abortar y a distorsionarse. Como resultado del daño de su alimentación, áreas corchosas de color cafés aparecen entre las venas principales del envés de las hojas. Las hojas jóvenes algunas veces llegan a cambiar de color verde amarillento y deformarse en los foliolos. Las flores y frutitos abortan y la planta detiene su crecimiento. El daño en la hoja casi siempre llega a ser una decoloración de su color verde intenso a verde amarillento o de color translúcido si se pone en contra de la luz solar. También se observa un manchado de color café en la partes tiernas ocasionando necrosis en las partes apicales (Iacob, 1978). 1.3.1) DAÑOS INICIALES Esta plaga al atacar a los brotes tiernos, succiona los fotosintatos, ocasionando una serie de daños en la planta, entre los que destacan los siguientes: • Una decoloración o clorosis característica del ataque de ácaros, tanto en el haz como en el envés. • Deformaciones en las nervaduras de las hojas asemejando la fase inicial de los síntomas del VMAP. • Las hojas atacadas se vuelven duras y quebradizas. • Disminución o detención del crecimiento del meristemo apical o cogollo. • Promueve la caída de hojas. 1.3.2) DAÑOS INTERMEDIOS

Como daños secundarios al ataque de la araña cristalina o ácaro blanco se tienen los siguientes: • Una disminución en el desarrollo de los frutos. • Aborto de botones florales, flores y frutos pequeños. • La lámina foliar afectada puede tardar como mínimo 3 semanas para recuperar su color y hasta 1 mes para que la planta recupere nuevamente su follaje y apariencia sana. • Quemadura de los frutos por efecto de la defoliación de la parte apical.

1.3.2) DAÑOS AVANZADOS Cuando las poblaciones de ácaros no se combaten a tiempo, el control es muy difícil, por lo que en muchas ocasiones llegan a dañar de manera irreversible a la planta en la parte apical (cogollo) de tal forma que inhibe y llega a matar el punto de crecimiento, trayendo como consecuencia la muerte de la planta. En muchas ocasiones debido a este síntoma el ataque avanzado del ácaro blanco se llega a confundir con el Virus de la Necrosis Apical de la Papaya (VNAP).

1.4) HÁBITOS En ataques fuertes y cuando el cultivo no se maneja de forma adecuada, se han encontrado asociados al ácaro blanco (P. latus) con los ácaros rojos (T. cinnabarinus) y otras especies de arañas rojas propias del cultivo, lo que dificulta el control y el ataque se hace más intensivo en toda la planta, así como la formación de telaraña de ambas especies ocasionando dificultad para las aspersiones. En éstos casos se recomienda aplicar acaricidas sistémicos mezclados con acaricidas de contacto, realizando tres aspersiones dirigida a toda planta (hojas por ambos lados, pecíolos, flores y frutos), una cada cinco días y manteniendo bajas las poblaciones con un excelente monitoreo de las poblaciones. El daño ocasionado en las flores y frutos es diferente entre plantas. El ácaro blanco no es vector de ninguna enfermedad viral en plantas conocida (Waterhouse y Norris, 1987; Higa y Namba, 1970).

1.5) BIOLOGIA El ciclo de vida de huevo a adulto se completa entre 4-6 días. El número de huevos que cada hembra ovoposita, así como las poblaciones de ácaros son afectados por la temperatura y la humedad relativa (Jones and Brown, 1983). 1.5.1) HUEVOS Los huevos de la araña cristalina son de forma oval y ligeramente aplanados (Lavoipierre, 1940). La exposición de la superficie translúcida es cubierta con 5 o 6 huevos llamados tubérculos. Los huevos son aproximadamente de 0.7 mm de largo y pueden se observados con lentes de 14X, éstos son por lo general ovopositados sobre el envés de los nuevos brotes u hojas de la planta (Hill, 1983). Los huevos ovopositados sobre la superficie del fruto los colocan para protegerlos entre las depresiones del mismo. (Waterhouse and Norris, 1987; Brown and Jones, 1983). Por lo general los huevos eclosionan en 2 a 3 días. 1.5.2) LARVAS

Las larvas son muy pequeñas, de tamaño casi imperceptible a simple vista (Hill, 1983) y tienen tres pares de patas. Exactamente después de la eclosión las larvas son translúcidas, pero las hembras se llegan a tornar de color verdes amarillentas o verde oscuras y los machos café amarillentos (Waterhouse y Norris, 1987). La larva dura de 1-3 días antes de cambiar al estado pupal. Las larvas y los adultos prefieren desplazarse por lo general sobre el envés de las hojas cerca de los huevos. 1.5.3) PUPAS El estado de pupa de esta araña es un corto periodo en la cual ésta no sufre cambios. Los sexos son similares aparentemente, excepto por los cuatro pares de patas. En los machos los cuatro pares de patas son más grandes; en las hembras, los cuatro pares de patas son más cortas y con mayor movilidad (Lavoipierre, 1940). El estado pupal dura de 2 a 3 días. Las pupas masculinas por lo general no se mueven, pero emigran hacia nuevas hojas en crecimiento llevando y desarrollando a la pupa femenina como hijos después de que el adulto macho emerge (Hill, 1983). 1.5.4) ADULTOS Los ácaros son muy pequeños y se dificulta su observación a no ser por el uso de lentes de aumento o lupas. Los adultos son elípticamente redondeado, peroligeramente ovalados de la parte frontal (Brown y Jones, 1983). Las hembras son de aproximadamente (1.5 mm) de largo, y los machos son ligeramente más cortos pero más anchos (Lavoipierre, 1940). Los especimenes vivos son ligeros y de un color verde-amarillento translúcidos. Una línea blanca visible corre de manera longitudinal bajo el tórax de la hembra. Los especimenes muertos son de color café amarillento. Estos tienen 4 pares de patas blanquecinas, pero los cuatro pares de la hembra adulta son de menor tamaño. Las hembras viven por aproximadamente 10 días y ponen en promedio de 2 a 5 huevos por día (20-50 huevos por hembra) (Hill, 1983; Brown y Jones, 1983). Sin fertilización, las hembras producen huevos de los cuales solo nacen de la progenie machos (Waterhouse y Norris, 1987). 1.5.4.1) ADULTOS MACHOS Los adultos machos tienen una especialización en su último par de patas y casi siempre transportan una pupa femenina sobre su cuerpo (Brown y Jones, 1983). Los machos casi siempre transportan las pupas hacia las nuevas hojas que van emergiendo. La copulación ocurre inmediatamente después que las hembras han cambiado de su estado pupal a adultos. (Waterhouse y Norris, 1987), 1.5.4.2) ADULTOS HEMBRAS En relación a los machos, las hembras son relativamente sedentarias (Waterhouse y Norris, 1987), pero en general la especie es considerada de rápida movilidad (Brown y Jones, 1983).

1.6) MANEJO 1.6.1) CONTROL BIOLÓGICO A lo largo del mundo, los enemigos específicos naturales no son conocidos y esto ha dado como resultado que se desconozca su control biológico. Sin embargo, muchos predadores naturales de ácaros muestran un control satisfactorio en muchas regiones. Algunos ácaros rojos del Maracuyá en Hawai son controlados de manera satisfactoria por la introducción de predadores

introducidos (Waterhouse y Norris, 1987), sin embargo de esta especie se desconoce sus predadores naturales. 1.6.2) CONTROL QUÍMICO Este ácaro es susceptible a algunos químicos, tales como los compuestos de Dinitrofenol y los piretroides sintéticos (Vaissayre, 1982). Sin embargo, varios tratamientos químicos son efectivos. Muchos acaricidas de contacto con actividad residual tienen un excelente control debido al corto tiempo de incubación de los huevos (Brown y Jones, 1983). Las aplicaciones foliares dirigidas a los brotes y nuevos crecimientos del ápice son mejores. En Hawai el óxido de fenbutain (Vendex) y el Diazinón provee un satisfactorio control. El Endosulfán provee un mejor control, sin embargo junto con el Dicofol a pesar de ser muy efectivos son de fuerte efecto residual y al grupo químico a que pertenecen son actualmente prohibidos en la mayoría de los países. Para los casos de ataques fuertes, se requiere una segunda aplicación de acaricidas a los 5-7 días después de la primera cuando el ataque de éstos es muy fuerte (Hill, 1983). El azufre es efectivo pero requiere de 2-3 semanas para controlar adecuadamente y se necesita aplicar al inicio de los primeros focos (Swaine, 1971; Brown y Jones, 1983). También se han utilizado varias moléculas químicas que han presentado un buen control de esta plaga. La inmersión del cepellón con las raíces de la plantas en Clorpirifos, methamidofós, monocrotophos, fosfamidon, acefato o carbofurán ayudan a protejer a la planta 28 días después de transplantada (Dhandapani y Jayaraj, 1982). El dimetoato o el dinocap son recomendados en Tonga (Waterhouse y Norris, 1987). Es necesario tomar en cuenta que a medida que se usen más productos químicos, se va a interferir más con la fauna insectil benéfica y se tendrá menor control biológico por éstos enemigos naturales. Además es necesario tomar en cuenta que algunos acaricidas químicos podrían encarecer el cultivo por los altos costos que ello implica. Para disminuir los costos de éstos productos y los problemas de éstos ácaros, se recomiendan la aplicación de azufre en polvo en los focos iniciales de infestación y de azufre humectable o en suspensión acuosa, ya que es un producto que controla de manera eficaz, difícil de desarrollar resistencia en el ácaro y de bajo costo.

1.6.3 CONTROL CULTURAL Como medidas de control cultural se recomiendan las siguientes: • •

• • • •

Poda de hojas amarillas, senescentes y que estén pegando al suelo. Eliminación de malezas hospederas de ácaros al menos 100 metros alrededor de la plantación, ya que éstos llegan a las huertas sanas transportadas por medio del viento y sus telarañas casi invisibles al ojo humano. El control se puede hacer de manera química con herbicidas o de manera manual. Siembra de pasto u otra especie rastrera cerca de los caminos. Muestreo de ácaros y aplicaciones localizadas. Mantener un excelente manejo del riego y una humedad adecuada, sobre todo cerca de los caminos donde se levante abundante polvo. Se pueden instalar microaspersores o goteros especiales para disminuir las tolvaneras. Manejo de la nutrición mediante análisis de suelos, sobre todo microelementos como Calcio, Magnesio, Manganeso, Boro y Fierro, ya que las cantidades óptimas en el papayo, se han asociado a una mayor tolerancia y resistencia del cultivo al ataque.

•

Para el ahorro de acaricidas sobre todo de los de alto costo como las abamectinas, piridaben y óxido de Fenbutain se recomienda aplicar solo en la parte apical si el ácaro identificado sea el P. latus, y aplicar solo en las hojas basales y el primer y segundo tercio de la planta si el ácaro identificado es T. cinnabarinus o ácaro rojo.

1.7) BIBLIOGRAFIA CONSULTADA Brown, R.D. and V.P. Jones. 1983. The Broad Mite on Lemons in Southern California. California Agriculture. 37(7/8) 21-22. Denmark, H.A. 1980. Broad mite, Polyphagotarsonemus latus (Banks) (Acarina: Tarsonemidae) on Pittosporum. Fla. Dept. Agric. and Consumer Services Division of Plant Industry. Entomology Circular No. 213. Dhandapani, N. and S. Jayaraj. 1982. Effect of Chilli Seedling Root Dip in Insecticides for the Control of Sucking Pests. Pestology. 6(3): 5-10. Ewing, H.E. 1939. A Revision of the Mites of the Subfamily Tarsoneminae of North America, the West Indies, and the Hawaiian Islands. U.S. Dept. Agri. Tech. Bull. No. 653. 64 pages. Higa, S.Y. and R. Namba. 1971. Vectors of the Papaya Mosaic Virus in Hawaii. Proc. Hawaiian Entomol. Soc. 21(1): 93-96. Hill, D. S. 1983. Polyphagotarsonemus latus (Banks). pp. 504. In: Agricultural Insect Pests of the Tropics and Their Control. Cambridge University Press. 746 pages. Iacob, N. 1978. New Mite Pests on Greenhouse Crops and on Grapevine (abstract only). Rev. Appl. Entomol. Ser. A. 67(12): 595-596. Jones, V.P. and R.D. brown. 1983. Reproductive Responses of the Broad Mite, Polyphagotarsonemus latus (Acari: Tarsonemidae), to Constant Temperature-Humidity Regimes. Ann. Ent. Soc. Am. 76(3): 466-469. Lavoipierre, M.M.J. 1940. Hemitarsonemus latus (Banks) (Acarina), a Mite of Economic Importance New to South Africa. J. Entomol. Soc. Southern Africa. 3: 116-123. Waterhouse, D.F. and K.R. Norris.1987. Chapter 31: Polyphagotarsonemus latus (Banks). In: Biological Control Pacific Prospects. Inkata Press: Melbourne. 454 pages. Vaissayre, M. 1982. Observations relating to the economic impact of acariosis caused by Polyphagotarsonemus latus (Banks) in cotton crops (abstract only). Rev. App. Entomol. Ser. A. 71(6): 509.

2) ARAÑA ROJA (Tetranichus spp.) 2.1 ANTECEDENTES El nombre común de esta plaga es Acaro rojo, araña roja, entre otros. Y los nombres científicos de los diferentes géneros y especies son muy variados según el país y regiones productoras de papaya: Tetranychus desetorum, T. urticae, T. cinnabarus. T. mexicanus Mc Gregor;

Panonychus citri Mc Gregor (ácaro rojo de los cítricos); Paratetranychus sp. ; Brevipalpus phoenicis (Geijskes). 2.2 DAÑOS Este ácaro, se presenta en el envés de las hojas adultas, el pecíolo, tallo y frutos. El primer síntoma es una clorosis a lo largo de la nervadura de las hojas; al incrementarse la incidencia hay una defoliación prematura de las hojas inferiores y posteriormente ataca a los frutos, donde se observan una especie de raspadura con cicatriz corchosa ya que se alimentan de savia mediante la introducción de su aparato bucal en forma de estilete. La araña roja se localiza en el envés de las hojas agrupadas en torno a las nervaduras. Su daño lo causa al succionar la savia. En el haz de las hojas se notan zonas circulares blanquecinas que reducen la fotosíntesis y en casos fuertes causa severas defoliaciones de plantas. En el caso de México y Sudamérica las poblaciones aparecen a partir de Marzo y aumentan rápidamente para alcanzar su nivel más alto en el mes de Julio, después bajan y vuelven a subir un poco en Septiembre, posteriormente se abaten y aparecen en Diciembre. En la época seca los ácaros se han localizado en un 82 % de las plantas revisadas. En daños muy avanzados, crecimiento rápido de las poblaciones y altas temperaturas, se recomiendan tres aplicaciones cada 5 días de manera consecutiva para poder tener un buen control. Se recomienda aplicar un acaricida sistémico que mate adultos, ninfas y huevos a la vez, en caso de no existirlo en el mercado se recomienda mezclar dos ingredientes activos en la misma aplicación, conociendo o haciendo pruebas previas de compatibilidad, y en la segunda aplicación se recomienda un acaricida piretroide que mate adultos y ninfas, y por último la aplicación de azufre humectable para dejar protegida la planta al menos por 30 días antes del resurgimiento de nuevas poblaciones, por lo que se recomienda los muestreos y control de nuevos focos de infección. 2.4 HOSPEDEROS Este ácaro ataca cerca de 100 especies cultivadas y silvestres. Esta es una importante plaga de cultivos como frijol, chiles, tomates, cucurbitáceas y muchos otros vegetales. Este también es una plaga del papayo, maracuyá, y muchas otras frutas. El ácaro rojo también ataca muchas flores y plantas ornamentales tales como clavel, crisantemo, gladiola, margaritas y rosa. 2.5 DISTRIBUCION Esta araña tiene una amplia distribución mundial y está presente en la mayoría de los países tropicales y subtropicales en donde se cultiva el papayo. En Hawai se reporta en la mayoría de las islas. 2.6 DAÑOS La araña roja tiene un amplio rango de hospederos de todas las especies Tetranychidae en Hawai, y es de gran importancia económica (Goff, 1986). Los adultos y ninfas se alimentan principalmente del envés de las hojas. El haz de las hojas se llega a manchar con pequeñas manchitas que son las picaduras de los ácaros. Las arañas tienden a alimentarse en "focos" casi siempre cerca de la parte central y nervaduras. Los daños producidos por estas arañas casi siempre son visibles. Las hojas casi siempre llegan a ponerse manchadas y descoloridas y pueden llegar a marchitarse. 2.7 BIOLOGÍA

La araña roja de manera normal completa su ciclo de vida de huevo a adulto en aproximadamente una semana. Todos los estados de esta araña se presentan a través de los años. La reproducción es más favorable cuando el clima es caliente y seco. 2.7.1 HUEVOS Los huevos son esféricos, brillantes, de color café claros, y eclosionan en 3 días. Estos son solo de aproximadamente de 1/254 pulgadas de diámetro. Estos son ovopositados debajo de la superficie de las hojas a un lado de los focos en donde se localizan los adultos. 2.7.2 LARVAS Las larvas son ligeramente más grandes que los huevos, de color rosadas, y tienen tres pares de patas. En este estado dura un periodo muy corto, aproximadamente un día. 2.7.3 NINFAS Existen dos estados ninfales: la protoninfa y la deuteroninfa. El estado ninfal difiere del estado de larva por ser ligeramente más grande, de colores rojizos o verdosos, y tienen 4 pares de patas. En este estado ninfal pasa aproximadamente en 4 días. 2.7.4 ADULTOS Los adultos femeninos son de aproximadamente 1/50 pulgadas de largo, rojizos, y más o menos elípticas. Los machos son ligeramente más pequeños y menos redondeados. Estos tienen una mancha negra sobre su cuerpo. Las hembras adultas pueden vivir más de 24 días y poner 200 huevos.

2.8 MANEJO 2.8.1 CONTROL QUÍMICO Las aspersiones deben realizarse cuando se observen de 5 a 10 arañas por hoja. Dirigir las boquillas hacia el envés y hojas basales de la planta; en altas infestaciones aplicar a hojas, flores y frutos. En la huertas de papaya donde se necesita control químico se recomienda el uso de el azufre líquido ya que no afecta las poblaciones de Stethorus, Otros productos acaricidas recomendados son: Oxido de fenbutain, Azadirachtina, Avermectina, Bifentrina, Piridaben, con muy buenos resultados.

2.8.2 CONTROL CULTURAL • Eliminación continúa de las hojas más viejas, amarillas, senescentes y que estén en contacto con el suelo. • Cortinas rompevientos. • Mantener alta humedad relativa por medio de un programa adecuado de riego ya sea por goteo, microaspersión, aspersión o subfoliar. • Mantener pasto Privilegio podado para evitar erosión y polvo excesivo entre calles. • Aislamiento de otros huertos de papayo 1500 metros o más. 2.8.3 CONTROL BIOLÓGICO El mayor depredador natural de la araña roja es un escarabajo llamado Stethorus sp. Este escarabajo se alimenta sobre todos los estados de estas arañas y en condiciones de laboratorio

cada individuo consume en promedio 2, 400 arañas. La actividad de este escarabajo predador es mucho mayor en cultivos con hojas pequeñas sobre el envés. Otro depredador de arañas, tal como el Phytoseiulus macropilis, es también efectivo sobre muchos cultivos en el control de araña carmin. Estas son también depredadores fuertes de Trips además de alimentarse de arañas. Se recomienda no aplicar productos si no se observan daños iniciales como los descritos ya que existe una Catarina del género Stethorus sp., que se alimenta de huevecillos; Los insectos jóvenes y adultos de este benéfico coleóptero ejercen en ocasiones un excelente control natural.

2.9 BIBLIOGRAFIA CONSULTADA Goff, L. Spider Mites (Acari: Tetranychidae) in the Hawaiian Islands. International Journal of Acarology. 12(1): 43-49. Hill, D.S. 1983. Tetranychus cinnabarinus (Boisd.). pp. 501-502. In Agricultural Insect Pests of the Tropics and Their Control, 2nd Edition. Cambridge University Press. 746 pages. LaPlante, A.A. and M. Sherman. 1976. Carmine Spider Mite. Cooperative Extension Service, College of tropical Agriculture, Insect Pest Series No. 3. 2 pages.

Grupo II.- INSECTOS QUE ATACAN AL PAPAYO II.I.- INSECTOS QUE ATACAN EL FOLLAJE (IAF) 1) PULGONES O ÁFIDOS (Aphis gossypii, Aphis nerii, Aphis citricola, Aphis spiraecola, Macrosipum euphorbiae, Myzus persicae) 1.1) ANTECEDENTES Y DESCRIPCIÓN Los áfidos (Homóptera : Aphididae) son pequeños insectos de cuerpo blando, que en su proceso evolutivo han sufrido diversas modificaciones para adaptarse como parásitos específicos de plantas. Entre estas adaptaciones está la forma especial de alimentarse, su reproducción (sexual y partenogenética). Otras características importantes de éstos insectos son la neotenia, la alternancia de hospederos, la habilidad de las formas aladas para trasladarse a grandes distancias y la de ser vectores de enfermedades de plantas. Normalmente no llegan a formar colonias, sino se encuentran individuos aislados ocasionalmente en las plantas. Numerosas especies de áfidos son vectores de la enfermedad, pero el más eficiente es el pulgón de los melones Aphis Gossypy Glov., común en hortalizas. Son insectos pequeños en forma de pera, de antenas largas, aparato bucal picador-chupador y dos cornículos en la parte posterior del abdomen. 1.2) BIOLOGÍA En las condiciones tropicales la reproducción se realiza sin la participación de los machos, por lo que las colonias y poblaciones están constituídas exclusivamente por hembras partogenéticas, que pueden poseer alas o no en dependencia de la disponibilidad de alimento o espacio. Su control no es fácil ya que su estancia es transitoria y se manteen poco tiempo sobre los papayos. 1.3) DAÑOS

Succionan la savia de las hojas, principalmente las del cogollo, sin embargo, el daño principal que pueden producir en el cultivo del papayo es la de transmitir el virus de la mancha anular. Segregan una sustancia azucarada que atrae a las hormigas y sirven de sustento al hongo conocido vulgarmente como “fumagina”. Causan daño a las plantas recién transplantadas o jóvenes y están relacionados con la transmisión del virus de la mancha anular. El daño directo lo producen al succionar la savia principalmente de la hoja. Estos, al igual que los ácaros se encuentran por colonias en el envés de las hojas. En altas poblaciones producen el debilitamiento de la planta, defoliación, exposición de frutos y pérdida de su valor comercial. Las poblaciones aumentan en época de sequía y se detecta su presencia al observar hormigas vaqueras (en simbiosis con la plaga). En el caso del papayo el daño producido es de manera indirecta como vector del virus de la mancha anular. 1.4) MANEJO 1.4.1) CONTROL QUÍMICO Algunos productos recomendados para elcontrol de éstos vectores de virus en el cultivo son: el Dimetoato, Ometoato, Carbaril, Thiamethoxán, Imdacloprid, Pimetrozyne y Thiocloprid.

1.4.2) CONTROL CULTURAL La utilización de barreras vivas de jamaica, sorgo forrajero, maíz, pasto Merkeron y Cempasúchitl, disminuyen en gran medida la entrada de éstos vectores a las plantas del papayo y a su posterior infección.

1.4.3) CONTROL FÍSICO Para disminuir la incidencia y entrada de pulgones desde fuera de la huerta hacia las barreras trampa y de las enfermedades virales se recomienda el uso desde 100 trampas amarillas, embarradas con pegamento o adherentes comerciales. El uso de cintas reflejantes alrededor de la plantación y la pintura blanca o caldo bórdeles aplicados a los primeros 40 cm del tallo han dado resultados positivos al disminuir la preferencia de los áfidos a la planta. La cobertura del suelo con materiales como plástico acolchado de color gris palteado o negro, tela de aluminio y otros se utilizan también como disuasivos contra los áfidos. 1.4.4) CONTROL BIOLÓGICO Numerosos enemigos naturales (depredadores y parásitos) son capaces de mantener sus poblaciones de manera que no causen daño económico, pero cuando dicho control no s suficiente, se hace necesario complementarlo con la aplicación de insecticidas. Los insectos afidofagos que han sido reportados pertenecen a varios órdenes, destacándose las familias Chryspidae (Neuroptera), Coccinellidae (Coleoptera) y Syrphidae (Diptera). Algunas especies de arañas también pueden depredar áfidos. Un grupo interesante e insectos lo constituyen los himenópteros parasitoides de la familia Aphidiidae, entre los que se cuentan géneros como Aphelinus, Diaretiella, Lysiphlebus y Aphidius. Entre los organismos patógenos que afectan a los áfidos se encuentran hongos como Verticillium lecanii y Entomopthora sp. que pueden tener un valor potencial como alternativa de control

1.4.5) BIBLIOGRAFIA CONSULTADA Adlerz, W. C. 1987. Cucurbit Potyvirus Transmission by Alate Aphids (Homoptera: Aphididae) Trapped ALive. J. Econ. Entomol. 80(1): 87-92.

Blackman, R. L. and V. F. Eastop. 1984. Aphids on the World's Crop: An Identification and Information Guide. John Wiley & Sons: Chichester, New York. 466 pages. CATIE. 1990. Proyecto Regional de Manejo Integrado de plagas. Guía para el manejo de plagas del cultivo de tomate/ CATIE. Proyecto Regional MIP. Turialba, Costa Rica.: CATIE/MIP. 138 pág. Cook, E. F. 1984. Aphis (Homoptera: Aphididae) Recorded from Compositae in North America, with a Key to the Species East of the Rocky Mountains and Comments on Synonymy and Redescriptions of Some Little Known Forms. Ann. Entomol. Soc. Amer. 77(4): 442-449. Elmer, H. S. and O. L. Brawner. 1975. Control of Brown Soft Scale in Central Valley. Citrograph. 60(11): 402-403. Metcalf, R. L. 1962. Destructive and Useful Insects Their Habits and Control. McGraw-Hill Book Company; New York, San Francisco, Toronto, London. 1087 pages. Pitre, H. N. and K. K. Shaunak. 1971. Alate Aphids Captured in Yellow Pans Placed Around a Corn Field in Northeast Mississippi. Florida Entomologist. 54: 167-170. Zimmerman, E. C. 1948. Aphis middletonii Thomas. pp. 83-84. In Insects of Hawaii. A Manual of the Insects of the Hawaiian Islands, including Enumeration of the Species and Notes on Their Origin, Distribution, Hosts, Parasites, etc. Volume 5. Homoptera: Sternorhyncha. 464 Págs.

2) MOSQUITA BLANCA (Bemisia tabaci y Trialeurodes vaporariorum) 2.1) DESCRIPCIÓN Los insectos adultos son pequeños insectos blancos de 1 a 2 mm de longitud, con el aspecto de polilla. Tienen dos pares de alas, cubiertas de cera fina. 2.2) DAÑOS La mosca blanca ataca el follaje de la papaya durante todo el año. El brote terminal y las hojas jóvenes son siempre las más afectadas, las pupas y los adultos llegan, ocasionando pérdida de vigor y reducción de rendimientos. Cuando el ataque es severo el follaje de la planta presenta el aspecto ennegrecido o ahumado característico de la fumagina que se forma sobre la miel que exudan los insectos, ésta también se forma sobre la fruta, dándole una apariencia de suciedad. Esto desmejora la calidad notablemente. Una planta densamente infestada no llega a desarrollar sus flores y el follaje se torna amarillo, rizado y presenta el aspecto ennegrecido característico de la fumagina. Una planta densamente atacada no llega a desarrollar sus flores y el follaje se torna amarillo y rizado, en general el árbol carece de vigor. 2.3) BIOLOGÍA En México, el ataque más severo es en los meses de Noviembre a Mayo. Las plantas que crecen en lugares sombreados o que están débiles, sufren más los efectos del ataque del insecto. Se producen numerosas generaciones por año, con un ciclo de vida de cerca de 21 días. Los huevos eclosionan en 5 días, seguidos por tres etapas de ninfas (3 a 6, 3 y 2 días) y emergencia de adultos, los cuales pueden vivir días o semanas. Los adultos se encuentran alimentando en las superficies inferiores de las hojas y de esta forma las plantas atacadas se reconocen fácilmente porque al sacudirlas, un gran número de pequeñas moscas blancas vuelan en confusión. 2.4) DAÑOS

Las hojas se ven más o menos ennegrecidas por la presencia de fumagina. Cuando el ataque es muy fuerte, en los frutos se observa una mielecilla negra, que es una mezcla entre exudado de éstos y de la fumagina. Los frutos disminuyen o detienen su crecimiento en ataques fuertes e incluso llegan a deformarse y los frutos próximos a su madurez tienden a perder su consistencia y a disminuir sus grados Brix al madurar; Estos frutos también presentan cierta predisposición a desarrollar hongos, principalmente Antracnosis (C. gloesporioides y G. cingulata). 2.5) MANEJO 2.6) CONTROL QUÍMICO Los productos químicos recomendados para su control son Thiamethoxán, Imdacloprid, Pimetrozyne y Thiocloprid. Si la mosca blanca se presenta durante las primeras semanas después del transplante, es necesario realizar las aplicaciones para evitar el aumento de la población, se sugiere también para el control químico la aplicación de aceites minerales, desemilla de algodón, ajonjolí y girasol. 2.7) CONTROL FÍSICO Y QUÍMICO Los aceites minerales o vegetales también se pueden emplear sobre láminas de color amarillo que se ubican en el campo para servir de trampas. Las moscas blancas se adhieren al aceite, el cual empapa las escamas de sus alas y produce una muerte rápida. Se recomienda no mezclar el aceite mineral con el insecticida 2.6) CONTROL BIOLÓGICO Varias especies de la familia Coccinellidae constituyen sus enemigos naturales, no obstante, cuando no abunda este aleuródido se recomienda usar el control químico. 2.7) BIBLIOGRAFÍA CONSULTADA • •

• • • •

Berlinger, M.J. 1986. Host plant resistance to Bemisia tabaci. Agric. Ecosyst. Environ.17: 69-82. CATIE. 1990. Proyecto Regional de Manejo Integrado de plagas. Guía para el manejo de plagas del cultivo de tomate/ CATIE. Proyecto Regional MIP. Turialba, Costa Rica.: CATIE/MIP. 138 pág. Ohnesorge, B., N. Sharaf & T. Allawi. 1980. Population studies on the tobacco whitefly Bemisia tabaci Genn. (Homoptera: Aleyrodidae) during the winter season. I. The spatial distribution on some host plants. Zeits. Angew. Entomol. 90: 226-232. Simmons, A.M. 1994. Oviposition on vegetables by Bemisia tabaci (Homoptera: Aleyrodidae): temporal and leaf surface factors. Environ. Entomol. 23: 381-389. Summers, C.G., A.S. Newton Junior & D. Estrada. 1996. Intraplant and interplant movement of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) crawlers. Environ. Entomol. 25: 1360-1364. Vieira, M.R. & L.S. Correa. 2001. Ocorrência de moscas brancas (Hemiptera: Aleyrodidae) e do predador Delphastus pusillus (LeConte) (Coleoptera; Coccinellidae) em mamoeiro (Carica papaya L.) sob cultivo em ambiente protegido. Neotrop. Entomol. 30: 171-173.

3) CHICHARRITA VERDE (Empoasca spp.) 3.1) CLASIFICACIÓN Las chicharritas que atacan al cultivo de papaya son del género Empoasca y según el país o región en donde se cultive el papayo se han identificado cuatro especies asociadas a la transmisión de enfermedades fitoplasmáticas y daños al follaje y son: Empoasca stevensi Young, Empoasca papayae Oman, Empoasca fabae y Empoasca dilitaria. 3.2) NOMBRES COMUNES A esta plaga se le conoce con los siguientes nombres: Cigarrinha verde (Brasil), cigarra verde (Sudamérica), chicharrita verde (México y Centroamérica), saltahojas (Cuba y las Antillas).

3.3) ANTECEDENTES Las chicharritas del género Empoasca están relacionadas con la transmisión del micoplasma que causa el “Bunchy Top del Papayo” (BTP), “Arrepollamiento del cogollo” o “Cogollo Arrepollado”. 3.4) DESCRIPCIÓN DEL INSECTO Es un insecto de 3 a 3.5 mm de color amarillo verdoso, forma triangular y alas transparentes que saltan bruscamente al ser molestados. Ponen los huevos debajo de la epidermis, en el envés de las hojas. Las ninfas son verdes, semejantes a los adultos, pero sin alas y caminan de lado; su ciclo de vida es aproximadamente de un mes. 3.5) DAÑOS Un ataque severo provoca arrugamiento de hojas que posteriormente se secan y caen prematuramente. Tanto las ninfas como los adultos succionan la savia, el follaje se torna amarillento y las plantas se debilitan. En las hojas tiernas suele aparecer lo que se llama “quemadura de la punta” y en el resto del follaje, el arrugamiento de las hojas. Es un eficiente transmisor del bunchy top o cogollo arrepollado, enfermedad de origen micoplasmático y del virus de la necrosis apical. Un ataque severo promueve la senescencia y amarillamiento de la hoja, estimulando su secamiento y caída de manera prematura. 3.6) MANEJO 3.6.1) CONTROL QUÍMICO Para su control químico se recomiendan los siguientes productos aplicados cada 5-7 días según el grado de infestación y las temperaturas, el orden sugerido de aplicación es el siguiente: Pimetrozyne, Imidachloprid o Thiamethoxám, con éstas tres aplicaciones se puede tener un excelente control. En caso de identificar en los muestreos de chicharritas un 80% de chicharritas adultos y el resto de ninfas, se recomienda aplicar insecticidas del grupo de los piretroides (Bifentrina, Deltametrina, Lambda cyalotrina o bien Cypermetrina). BIBLIOGRAFIA CONSULTADA • • •

Beardsley, J. W. 1970. Notes and Exhibitions. Proc. Hawaii Entomol. Soc. 20(3): 484487. Ebesu, R. H. 1985. The Biology of the Leafhopper Empoasca stevensi Young (Homoptera: Cicadellidae) and its Toxicity to Papaya. MS. Thesis. University of Hawaii, Department of Entomology. Haque, S. Q. and S. Parasram. 1973. Empoasca stevensi, A New Vector of Bunchy Top Disease of Papaya. Plant Dis. Reptr. 57(5): 412-413.

4) GUSANO DEFOLIADOR (Erynnis spp. y Manduca sexta) 4.1) ANTECEDENTES Existen dos especies que atacan al cultivo del papayo y ambos son muy voraces en cuanto a la severidad en que atacan al cultivo y son: Erynnis ello y Erynnis allope. También se reporta a las larvas del esfíngido Manduca sexta que también se le conoce como gusano cachón. 4.2) NOMBRES COMUNES Los nombres comunes de estas plagas son: primaveras, gusano del cuerno, gusano cachón y gusano defoliador, gusano del tomate y del tabaco.

4.3) DESCRIPCIÓN El gusano cachón o del cuerno se presenta en todas las áreas productoras de papayo y ataca en cualquier época del año, principalmente en época de lluvias y si hay sembradíos de yuca cerca. La hembra es de hábito nocturno y deposita sus huevecillos en el envés de las hojas en forma aislada. Las larvas varían mucho en color (verde, amarillo, negro o combinaciones de éstos) y alcanza de 10 a 12 cm de diámetro. Las larvas son gusanos grandes de color verde con bandas oscuras oblicuas a lo largo del cuerpo y tienen un ápice característico en la parte dorsal del octavo segmento abdominal. Las pupas tienen forma cilíndrica con la parte final del abdomen aguda y de color café que va cambiando a café obscuro a medida de que crecen. Se pueden encontrar debajo de la hojarasca de residuos orgánicos, terrones, piedras, etc. 4.4) DAÑOS Devora rápidamente las hojas de cualquier edad, provocando serias defoliaciones. Se alimenta devorando inicialmente las hojas y brotes más tiernos y después de hojas más viejas, siendo muy voraces. También atacan plantas pequeñas y pueden defoliarla por completo. 4.5) DESCRIPCIÓN Y BIOLOGÍA El insecto adulto es una mariposa de color ceniza (polilla), grandes, robustas de 8 a 9 cm, de color gris-café con 5 bandas transversales amarillo claro y en el segundo par de alas poseen una gran mancha semicircular anaranjada. Tienen hábitos nocturnos. La primavera de la yuca (E. ello L.) también afecta al cultivo de la papaya y ocasiona daños similares.

Manduca sexta o gusano cachón o del cuerno, la larva puede llegar a medir hasta 80-90 mm de longitud, su color es verde o verde gris, con 7 rayas oblicuas laterales de color blanco y un cuerno en el extremo posterior. Las larvas pasan por 5 estadíos y empupan en el suelo. La pulpa es marrón, con un gancho característico que alberga la proboscis. El adulto es una mariposa que mide de 90 a 115 mm con las alas extendidas. Las alas delanteras son marrón con marcas grises y de color negras, las alas traseras y el abdomen gris obscuro, con parches o barras amarillas. 4.6) MANEJO 4.6.1) CONTROL BIOLÓGICO Frecuentemente se encuentran masas algodonosas rodeando a las orugas, a las que se les llama algodón de la papaya o de la yucca (Apanteles americanus (Lep), es un parásito interno muy común, enemigo natural de ambas especies. Algunos pájaros son también enemigos naturales de estos gusanos. Las poblaciones de M. sexta se mantienen bajo control por varias especies de enemigos naturales, tales como parásitos de huevos y larvas, así como depredadores y patógenos. 4.6.2) CONTROL QUÍMICO Puede ser efectuado a través del insecticida biológico Bacillus thuringensis (Dipel de 0.5 -1 Kg./Ha). Su control se logra aplicando carbaryl, que son polvos mojables al 50 % de producto activo. Los insecticidas piretroides han dado excelentes resultados en el control de éstas larvas. 4.6.3) CONTROL CULTURAL En las prácticas de control cultural se recomiendan la poda de hojas en donde suelen encontrase éstos gusanos y la eliminación manual. 4.7) BIBLIOGRAFÍA CONSULTADA •

CATIE. 1990. Proyecto Regional de Manejo Integrado de plagas. Guía para el manejo de plagas del cultivo de tomate/ CATIE. Proyecto Regional MIP. Turialba, Costa Rica.: CATIE/MIP. 138 pág.

5) DORADILLA O DIABRÓTICA (Diabrótica balteata) 5.1) Nombres Comunes Se le conoce de manera vulgar como doradilla, tortuguita, tortuguita verde y conchuela voladora. 5.2) DESCRIPCIÓN La hembra es de hábito nocturno y deposita sus huevecillos en el envés de las hojas. 5.3) BIOLOGÍA Las condiciones ambientales favorables para la aparición de las primeras poblaciones son altas temperaturas y las primeras lluvias. Entre las altas humedades relativas y días soleados se dan las más altas poblaciones y problemas de éstos insectos. En México se presentan entre los meses de Junio a Octubre. La larva, delgada como un hilo en sus primeros estadíos tiene cabeza café y una mancha obscura en el último segmento abdominal. Llega a medir hasta 10 mm y pasa por tres estadíos, volviéndose más corta y gruesa en su madurez. Empupa en el suelo en una celda de tierra. El adulto mide de unos 4-6 mm, es de color amarillo con bandas transversales verdes, cabeza roja, protórax y abdomen amarillos. El ciclo biológico puede durar entre 2840 días. 5.4) DAÑOS El principal daño que ocasiona este insecto en las plantas de papayo es una defoliación de la lámina foliar y de los brotes tiernos (chupones), ocasionando una serie de orificios en ésta. También se reporta que los insectos se alimentan de los estigmas de las flores de la papaya, lo cual ocasiona daños y deformidades en los ovarios desarrollados que son los nuevos frutos en crecimiento. 5.5) MANEJO 5.5.1) CONTROL QUÍMICO Se pueden tomar acciones de control químico cuando haya dos o más adultos por planta, sobre todo en las primeras etapas de crecimiento. Las plantas más desarrolladas toleran bastante más daño sin ser afectadas. Para el control químico de los adultos, se recomiendan los insecticidas piretroides y repelentes a base de Neem (Azadirachta indica). 5.5.2) CONTROL CULTURAL Se recomienda la poda y saneamiento de la planta de rebrotes y chupones cada 15-21 días para disminuir la preferencia del insecto al cultivo. 6) BIBLIOGRAFÍA CONSULTADA • CATIE. 1990. Proyecto Regional de Manejo Integrado de plagas. Guía para el manejo de plagas del cultivo de tomate/ CATIE. Proyecto Regional MIP. Turialba, Costa Rica.: CATIE/MIP. 138 pág.

7) PERIQUITO VERDE O PERIQUITO DEL PAPAYO (Aconophora projecta ) 7.1) DAÑOS Y SINTOMAS Generalmente ataca los cogollos donde se ven los insectos a simple vista. Succiona los fotosintatos y causa una disminución del crecimiento. 7.2) BIOLOGÍA

Las colonias formadas tanto de adultos como de todos los estadíos ninfales, se encuentran en el cogollo de la planta, debido a que prefiere las partes tiernas para alimentarse. Al igual que otros homópteros, éstos son gregarios y con su aparato bucal chupador succionan la savia debilitando la planta; en altas poblaciones producen problemas en las plantaciones. 7.3) MANEJO 7.3.1) CONTROL QUÍMICO Por cada litro de agua se aplica de 0.5-0.8 cc de ingrediente activo de Lambda cyalotrina o Cypermetrina por cada litro de agua. 7.4) BIBLIOGRAFÍA CONSULTADA • INIFAP. 2000. Manual para la producción de papayo en Veracruz. Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas y Pecuarias. Campo Experimental Cotaxtla. Gobierno del Estado de Veracruz, Méx. 121 p. 8) TRIPS (Thrips tabaci Linderman) 8.1) NOMBRES COMUNES A esta plaga comúnmente se le denomina “Trips de la cebolla”. 8.2) DESCRIPCIÓN Y DAÑOS Los trips causan una seria distorsión del follaje de las plantas jóvenes. Se ha observado en viveros sin protección por malla antiáfidos y ocasionan distorsión foliar, para lo cual se recomienda hacer una selección negativa de éstas plantas y eliminarlas para no transplantarlas al campo.

8.3) HOSPEDEROS Los trips de la cebolla atacan a diversos plantas tanto cultivadas como silvestres, sumando ambas se encuentran distribuídas en más de 25 familias. Entre los principales cultivos hospederos se encuentan: frijol, brócoli, coliflor, clavel,zanahoria, brócoli china, algodón, calabacita, ajo, melón, cebolla, papaya, garbanzo, piña, rosa, tabaco, jitomate y tomate de cáscara. 8.4) DISTRIBUCIÓN Se creyó que los trips tenían su origen en la región Mediterránea, sin embargo, los trips de la cebolla son Cosmopolitas y se distribuyen a través de todo el mundo. Este trips fue el primero encontrado en Hawaii en 1915 y actualmente se encuentra presente en todas las islas del estado. 8.5) DAÑOS Los trips se alimentan atravesando las células de manera individual y absorbiendo por medio de su aparato chupador el contenido. Estas células pierden su color normal y cuando se juntan muchas células dañadas el tejido aparenta como unas manchas blanquizcas o plateadas y grietas. En daños avanzados, las hojas toman una apariencia de daño muy agresivo. Como es común, muchas especies de trips, entre ellos los trips de la cebolla, dejan pequeños restos de excrementos de color negro quedando un aspecto de manchado sobre la superficie del tejido. Un daño importante se puede dar en especies en las que se hacer viveros o semilleros antes del transplante en el campo.

El daño directo lo causan las larvas y los adultos, esta plaga es también un importante vector del tomato spotted wilt virus y ha sido relacionado en la transmisión de la enfermedad en piña, tomates, y otros cultivos. 8.6) BIOLOGÍA Los estrados de desarrollo de su ciclo de vida son: huevo, primer estado larvario, Segundo estado larvario, prepupa, pupa y adulto. Debido a su pequeño tamaño, esta especie tiene un parecidos a otros trips y es difícil de identificar a las especies excepto con la ayuda de una lente de aumento (lupa). Para identificar a los adultos es necesario hacer uso de un microscopio de alta resolución. El ciclo de vida completo (de huevo a adulto) requiere de aproximadamente 19 días. Muchas poblaciones pueden tener un rápido desarrollo bajo las condiciones climáticas de las islas Hawaiianas donde estas tienen varias generaciones a lo largo de año. La repoducción de ésta especie en Hawaii es a través del proceso de partenogénesis en el cual las hembras tienen la habilidad para reproducirse en ausencia de individuos machos. Como resultado de esto, las poblaciones tienen la relación de 1 macho por cada 1000 hembras (Sakimura, 1932). 8.6.1) HUEVOS Las hembras poseen una estructura que ayuda a hacer una incision en el tejido de las plantas para colocar a sus huevos. Los huevos se colocan justo debajo de la epidermis de las hojas suculentas, flores, tallos o tejidos de los bulbos. Los huevos son elípticos, miden aproximadamente 1/125 pulgadas de largo. Tienen un pequeño depósito blanco y cambia a una tonalidad anaranjada conforme continua el desarrollo. La salida del cascarón ocurre entre los 45 días en Hawai y en condiciones tropicales. 8.6.2) LARVA Las larvas son de blanquizcas a amarillentas. Estas tienen dos estados larvarios y junto con los adultos son los únicos estados que ocasionan daños. El desarrollo larvario se completa en aproximadamente 9 días. 8.6.3) PUPAS Estas tienen dos estados llamados prepupa y la pupa. Estas no se alimentan de el jugo de las hojas, y reencuentran principalmente en el suelo. La combinación del desarrollo de la prepupa y de la pupa se completa en aproximadamente de 4-7 días. 8.6.4) ADULTOS Los adultos miden de 1/25 pulgadas de longitude. Su color de cuerpo tiene diferentes tonalidades y van desde Amarillo pálidos hasta café obscuros. En Hawai, éstas especies son de color obscuro durante la temporada lluviosa. Los machos son alados y muy raros. La vida de las hembras es de aproximadamente de dos a tres semanas y puede cada una poner aproximadamente 80 huevos. 8.7) MANEJO 8.7.1) CONTROL BIOLÓGICO

Esta plaga tiene muchos enemigos naturals que se han introducido en varias zonas tropicales y subtropicales que ayudan al control de esta especie. Sin embargo, solamente el parásito Ceranisus menes, ha sido estable. Desafortunadamente, el impacto de este parásito no se ha considerado de significativo. 8.7.2) CONTROL CULTURAL Las prácticas de control cultural pueden ayudar a reducir las infestaciones de los trips de la cebolla. La destrucción de restos de cultivos entre las siembras reduce la cantidad de esta plaga junto con otras técnicas de sanidad tales como la rotación de cultivos de especies no hospederas entre ciclos y siembra de los cultivos en tierras nuevas. 8.7.3) CONTROL QUIMICO Los trips pueden ser controlados por una amplia gama de insecticidas, sin embargo, casi siempre es muy dificil su control debido a sus hábitos de encrptación y a su tamaños diminuto. El control del insecticida depende de una adecuada molécula química para su aplicación cubriendo las partes de la planta donde los trips se esconden. Por ejemplo, el control de esta plaga sobre cebollas es muy difícil debido a que se esconden debajo de las hojas de la cebolla. Muchas larvas y trips se localizan en las axilas de las hojas donde casi siempre los insecticidas no llegan. Los trips muestran una preferencia a caminar sobre el tejido de las hojas, por lo que los insecticidas residuales de contacto son más efectivos. Los insecticidas sistémicos que son los que se transportan a través de los tejidos vasculares de las plantas no parecen ser tan efectivos si no se aplican de manera similar a los insecticidas de contacto (que se tenga una excelente cobertura), para un mejor desempeño en su acción. Un aspecto importante en el control de esta plaga es el intervalo aplicaciones de insecticidas. Desde huevos, prepupas y pupas, no se mueren de manera fácil por las aplicaciones de insecticidas, el tiempo requerido para la incubación de un huevo y el de desarrollo de la larva debe de ser tomado en cuenta para un buen control. Para el control de altas densidades de población de estaplaga durante el verano y periodos secos, se recomienda aplicaciones repetidas en intervalos de 7-10 días. 8.8) BIBLIOGRAFÍA CONSULTADA Clausen, C. P. (Ed.) 1978. Onion Thrips, (Thrips tabaci Lindeman). pp. 20-21. In USDA Agriculture Handbook #480: Introduced Parasites and Predators of Arthropod Pests and Weeds: A World View. 545 pages. Lockwood, S. 1956. Onion Thrips, Thrips tabaci. California Department of Agriculture, Bureau of Entomology. Loose-Leaf Manual of Insect Control. Mayer, D. F., J. D. Lunden, and L. Rathbone. 1987. Evaluation of Insecticides for Thrips tabaci (Thysanoptera: Thripidae) and Effects of Thrips on Bulb Onions. J. Econ. Ent. 80(4): 930-932. Saini, R. K., A. S. Dahiya and A. N. Verma. 1989. Field Evaluation of Some Insecticides Against Onion Thrips, Thrips tabaci Lindeman (Thysanoptera: Thripidae). Haryama Ag. Univ. J. Res. 19(4): 336-342. Shelton, A. M. and R. C. North. 1987. Injury and Control of Onion Thrips (Thysanoptera: Thripidae) on Edible Podded Peas. J. Econ. Ent. 80(6): 1325-1350.

Shelton, A. M., C. W. Hoy, R. C. North, M. H. Dickson and J. Barnard. 1988. Analysis of Resistance in Cabbage Varieties to Damage by Lepidoptera and Thysanoptera. J. Econ. Ent. 81(2): 634-640. Waterhouse, D. F. 1987. Thrips tabaci Lindeman, Thysanoptera: Thripidae, onion thrips. In Biological Control: Pacific Prospects -- Supplement 1. (Ed. D.F. Waterhouse and K.R. Norris). Inkata Press, Melbourne, Australia. Zimmerman, E. C. 1948. Thrips (Thrips) tabaci Lindeman. pp. 422-425. In Insects of Hawaii. A Manual of the Insects of the Hawaiian Islands, including Enumeration of the Species and notes on the Origin, Distribution, Hosts, Parasites, etc. volume. 2: Apterygota to Thysanoptera. The University Press of Hawaii, Honolulu. 475 pages. 9) HORMIGAS ARRIERAS (Atta sp. y Acvromyrmex spp) ANTECEDENTES La hormiga arriera o cortadora de hojas, en los bosques naturales, desempeña importantes funciones como las de acelerar el ciclaje de los bioelementos, airear el suelo, diseminar semillas, promover nuevos brotes de crecimiento en los árboles, sus vertederos de deshechos sirven de hábitat a algunas especies. No obstante, cuando la vegetación natural es removida para establecer cultivos de subsistencia y semicomerciales se presenta un aumento desbordado del numero de colonias e individuos que compiten con el hombre. NOMBRES COMUNES A esta plaga se les llama de diferentes formas, entre las que destacan: hormigas arrieras, hormigas vaqueras, hormigas corta hojas, zompopos. ORIGEN Y DISTRIBUCIÓN Las hormigas arrieras o cortadoras de hojas, Atta spp; Acvromyrmex spp (Hymenoptera: Formicidae) son originarias del Neotrópico, pertenecen a la tribu Attini, que agrupa a todas las especies de hormigas que cultivan hongos de los cuales se alimentan. Esta tribu con doce géneros comprende unas 210 especies en su mayoría en los bosques húmedos tropicales de Suramérica ; en la zona central del Departamento del Chocó se registraron individuos pertenecientes a los siguientes géneros: Atta, Acromyrmex, Cyphomyrmex, Trachymyrmex, Sericomyrmex y Mycocepurus. En Colombia se conocen ocho géneros de la tribu Attini. Los géneros Atta y Acromyrmex son los más evolucionados y los más recientes, se encuentran distribuidas en el continente americano entre los 330 de Latitud Norte y los 330 de Latitud Sur. Desde el sur de los Estados Unidos hasta la Argentina. Se presentan desde el nivel del mar hasta los 2000 a 3000 metros. Pero la razón del corte de hojas por las hormigas fue desconocida durante mucho tiempo. En 1874, Thomas Belt, naturalista e ingeniero de minas, escribió acerca del especial uso que las hormigas hacen de las hojas cual era el de preparar un sustrato en el que cultivan una especie diminuta de hongo del cual ellas se alimentan. Este descubrimiento marcó el inicio del estudio científico de esta simbiosis mutualista entre una hormiga y un hongo. La distribución y abundancia de la hormiga arriera (Atta; Acromyrmex) se encuentra asociada a la modificación de habitats terrestres, puesto que es frecuente encontrarlas en territorios que han sido desprovistos de la vegetación natural para el establecimiento de cultivos. CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA Las hormigas arrieras o cortadoras de hojas pertenecen a la tribu Attini, Familia Formicidae, Orden Hymenoptera. Una característica común a todas las Attine es que son cultivadoras de un hongo del cual se alimentan en una simbiosis mutualista. No obstante, las especies difieren en algunos aspectos, como tamaño del hormiguero y en los alimentos que ellas colectan para el crecimiento del hongo.

Evolutivamente se distinguen las Attini inferiores y las Attini superiores. Las primeras se considera que poseen la mayoría de sus atributos en común con las hormigas no cultivadoras de hongos, de las cuales ellas se originaron. Las hormigas cortadoras de hojas o arrieras (Atta y Acromyrmex) son las más recientes y se considera que en ellas se concentra la más alta evolución de la sociabilidad de los insectos. En el género Acromyrmex se reconocen 23 especies de las cuales cuatro especies han sido registradas en Colombia: Ac. octospinosus, Ac. aspersus, Ac. landolti y Ac. rugosus. En la zona central del Chocó se identificaron las dos primeras. En cuanto a Atta el número de especies reconocidas es de 14 reportándose para Colombia las siguientes: A. sexdens, A. laevigata, A. colombica y A. cephalothes. LA SIMBIOSIS Las hormigas arrieras (Atta spp & Acromyrmex spp) cultivan un hongo basidiomyceto (Leucocoprineae; Basidiomycotina) como su fuente primaria de alimento. Para el efecto, las hormigas cortadoras cosechan material vegetal alrededor de la colonia y lo transportan a cámaras subterráneas donde el hongo mutualista es cultivado. En este lugar el material vegetal es macerado y masticado hasta una pulpa y distribuido como medio de crecimiento para el hongo. Aunque siempre se pensó que los jardínes de las hormigas cultivadoras de hongos se encontraban libres de patógenos microbiales con el hongo simbiótico mantenido en condiciones casi de un monocultivo en los últimos años se ha descubierto que micoparásitos especializados pertenecientes al género Escovopsis (Ascomycota) con alta virulencia y capaces de devastar rápidamente los jardínes del hongo son huéspedes de los hormigueros ORGANIZACIÓN SOCIAL Las hormigas al igual que las abejas, avispas y termitas son insectos sociales, ya que, viven en colonias en las que los individuos agrupados en castas desempeñan labores diferentes. En el caso de arrieras del género Atta la población de cada colonia está conformada por individuos morfológicamente diferentes y su tamaño está relacionado con la función que cada uno de ellos cumple. 1) Hormigas sin Alas permanentes: a) Reina: Se encuentra una por hormiguero y es la de mayor tamaño, tiene como función la de colocar los huevos que darán origen a que se deben desarrollar en el hormiguero. Una reina de una hormiga cortadora puede vivir entre 10 a 20 años, siendo uno de los insectos con mayor longevidad b) Obreras: Constituyen la mayor proporción de a colonia y son las responsables de la alimentación y cuidados del hormiguero; son hembras estériles y de acuerdo a su tamaño y función se distinguen las exploradoras, cortadoras, cargadoras, escoteras, jardineras y soldados. c) Exploradoras: Son las encargadas de detectar el material vegetal que debe ser cortado y transportado a la colonia. Poseen un mecanismo químico para dejar huella y guiar a las otras operarias encargadas del corte y transporte del materia. d) Cortadoras: Se encargan de cortar fragmentos de hojas y transportarlos hasta el hormiguero. e) Cargadoras: En algunos casos transportan el material vegetal que cortan otras operarias.Además, extraen la tierra que sobra al formar los túneles. f) Escoteras: Son hormigas pequeñas que se suben a las hojas cuando son transportadas hacia el nido y en el trayecto le efectúan labor de limpieza. g) Jardineras: Hormigas muy pequeñas que mastican las hojas llevadas al nido, cultivan el hongo, cuidan la reina, larvas y trasladan huevos y pupas dentro y fuera del hormiguero.

h) Soldados: Son hembras de gran tamaño relativo que defienden el hormiguero para lo cual tienen desarrolladas sus mandíbulas y cabezas en comparación con los otros miembros de la colonia. se localizan en las entradas del nido y de los jardines del hongo. Esta casta solo existe en Atta. 2) Hormigas aladas (temporales): Durante cortos periodos del año la reina produce huevos que darán origen a hembras fértiles aladas (princesas) y machos los cuales se encargarán de perpetuar la especie al formar nuevos hormigueros. La proporción de sexos es en promedio de 6 machos por cada hembra. El vuelo nupcial: Cuando el hormiguero tiene el nivel adecuado de población de las diferentes castas, se dice que está maduro y esto ocurre alrededor de los tres años. En ese momento la reina coloca los huevos de machos y hembras aladas, los cuales alcanzan un tamaño corporal mayor que el de las demás castas y su emergencia ocurrirá por lo general en el periodo de inicio de lluvias. Cuando las condiciones ambientales son propicias (horas de la madrugada, sin lluvia) empiezan a emerger simultáneamente de todos los hormigueros vecinos, las hembras y los machos, caminan sobre la superficie por algunos momentos en busca de un lugar adecuado para el despeje, primero alzan el vuelo las princesas y tras ellas los machos; cada hembra es fecundada durante el vuelo hasta por ocho machos y acumula en una bolsa de su abdomen llamada espermateca la suficiente cantidad de esperma necesario para su futura reproducción durante 10 a 20 años. Cuando el esperma de la reina se agota, los huevos solo originan machos y el hormiguero se termina, lo mismo que cuando muere la reina. Después de su vuelo nupcial, la reina llega al suelo y con movimientos fuertes contra el suelo o con las mandíbulas, se corta las alas y abre un orificio en el suelo, se entierra 25 a 30 cm y empieza formar una cámara que se observa en la superficie como un montículo de tierra sin orificio, la boca se aprecia solo a partir del tercer mes. En la cámara, la reina expele un trocito del hongo que trae en su cavidad infrabucal, desde el hormiguero de donde provino, inicia el cultivo del hongo y la oviposición. Aproximadamente a los tres meses empiezan a salir las primeras exploradoras, encargadas de desarrollar el nuevo hormiguero. Al principio el crecimiento de la colonia es lento pero a partir del segundo a tercer año se acelera iniciándose la producción de machos y hembras alados La duración de las etapas por las que atraviesa la hormiga puede mostrar variaciones de acuerdo con el tipo de hongo con que se alimentaron las larvas y los adultos, asi como el efecto de las condiciones ambientales, en especial la temperatura. CICLO DE VIDA Adultos: Reina: 10-20 años Machos: 1- 4 meses; luego del vuelo nupcial caen al suelo extenuados y mueren paulatinamente. Huevos y larvas: Su duración es de 15 a 20 días. Prepupas: Tiene una duración de 5 dias. Pupas: Su duración es de 15 a 21 días Una colonia del género Atta spp consta de numerosas cámaras comunicadas entre sí, y con la superficie por una compleja red de canales. En la parte externa la estructura presenta formas muy variadas dependiendo de la especie. En A. colombica las colonias ubicadas en las partes bajas de las vegas de los ríos presentan una forma de domo; de esta manera pueden escapar a las frecuentes inundaciones del terreno. En Acromyrmex algunas especies construyen sobre las bocas una especie de chimenea, con pedacitos de pasto u otro material. El tamaño de los hormigueros también es variable. En un inventario que se realizó en cuatro localidades del Chocó, se encontró que en A. colombica la mayoría de las colonias no superaban los 85 m2 con una media de 48 m2 mientras que en A. cephalotes se registraron hormigueros con más de 500 m2 con un valor medio de 140 m2. Las especies de Acromyrmex registradas presentan una extensión muy reducida, limitada a troncos en árboles en descomposición, con un mínimo de bocas y jardines del hongo En los hormigueros se distinguen varias clases de cámaras: cámaras vivas, donde se encuentra el jardín del hongo; cámara real: donde se encuentra la reina; cámaras vacías, las recién construídas o desocupadas después de ser usadas, cámaras de basura o de deshechos donde se acumulan el hongo senescente, el

material vegetal agotado y hormigas muertas o enfermas. En el caso de Atta colombica los deshechos son depositados en vertederos sobre la superficie del suelo; este material se denomina "tierra de hormiga" en el Pacífico colombiano . HÁBITOS Actividades de una colonia: La actividad de una colonia de hormigas arieras puede dividirse en tres etapas: corte y transporte de material vegetal, cultivo del hongo y disposición final de deshechos. Corte y transporte de material vegetal: El corte y acarreo de fragmentos de hojas tiernas con buen contenido acuoso y bajo en compuestos potencialmente tóxicos para el cultivo del hongo lo realizan las operarias cortadoras. En la zona central del Departamento del Chocó esta actividad es predominantemente diurna en Atta colombica en tanto que en Atta cephalotes va a depender de las épocas de abundancia o escasez de lluvias, en este último caso lo realizan en horas de la noche entre las 6:00 y 10:00 P.M. En días despejados con un alto brillo solar y áreas desprovistas de vegetación las obreras paralizan temporalmente su actividad evitando las condiciones desecantes. Cultivo del hongo: Una vez en el interior del hormiguero el material vegetal es limpiado, raspado y cortado en pedazos muy pequeños de 1-2 mm de diámetro, luego son masticados e impregnados de saliva y fluidos anales. Una vez preparado este sustrato se coloca en cámaras donde las obreras insertan micelios del hongo que a las 24 horas se encuentra totalmente cubierto. El alimento de las hormigas son unas protuberancias esféricas llamados gongilidios los cuales se desarrollan en los extremos de las hifas, de donde las obreras los cortan. Disposición final de los deshechos: Cuando el sustrato vegetal pierde su valor nutrimental y el hongo finaliza su ciclo de vida, ambos son llevados por obreras especializadas hacia depósitos o vertederos de deshechos; a este sitio son conducidos también las hormigas muertas o enfermas. En el caso de Atta colombica y Atta mexicana las pilas de deshechos se ubican en el exterior de la colonia mientras que en las otras especies conocidas están confinadas en cámaras internas especiales. Hacia las pilas de deshecho confluye la mayoría de la materia que se mueve en el sistema. Comparado con la cubierta de hojarasca de un bosque húmedo tropical en un vertedero la circulación de los bioelementos se incrementa en decenas hasta cientos de veces. Al analizar el contenido nutricional de deshechos frescos se encuentra que sus contenidos de Nitrógeno, Fósforo y Potasio son relativamente altos al compararlos con otros abonos convencionales. DAÑOS Atacan principalmente a nivel de plántula en los viveros y después del tranplante de papayos y sobre todo en época de sequía; Puede hacer galerías en raíz, troncos y frutos, buscando humedad y producen una fuerte defoliación. Esta actividad la realizan principalmente durante la noche. La hormiga es mayor respecto a las hormigas que presentan mutualismo con los homópteros (las que ordeñan pulgones, piojo harinoso, escamas y moscas blancas), ya que éstas son más pequeñas. Al alimentarse del follaje reducen la capacidad fotosintética de la planta, con lo cual ocasionan retrasos en su desarrollo. En algunos casos, llegan a cortar la parte apical de crecimiento de las plantas de papayo en etapa vegetativa, con lo cual éste tarda mucho tiempo en volver a recuperarse, trayendo una desuniformidad en los huertos. Si los daños son muy severos pueden ocasionar la muerte de plantas pequeñas. CONTROL QUÍMICO La mayoría de los autores especialistas en el combate químico de esta plaga coinciden en que los productos químicos para combatir a la hormiga arriera son demasiado tóxicos y que ya no deberían de usar. Sin embargo, de los menos tóxicos y dañinos para el hombre, mamíferos, aves y peces, y con mejores resultados es el uso de los cebos envenenados a base de Sulfuramida. Se recomienda aplicar este cebo que viene en presentación de gránulos recubiertos de una sustancia que es agradable a las hormigas como alimento y éstas al identificarlo las meten a sus nidos, en donde se encuentra la reina y la mayoría de los huevos, y

al aumentar la humedad, el ingrediente insecticida es activado por esta y comienza a matar a la colonia, principalmente a la reina. CONTROL NO QUÍMICO Se recomienda aplicar extractos acuosos de ajo, la forma de prepararlo es la siguiente: se ponen a hervir en agua 20 cabezas de ajo medianas en 8 litros de agua, se dejan por 20 minutos a fuego lento y se deja reposar, se cuela y el extracto se aplica en los hormigueros según el tamaño de éste, aproximadamente de 3-5 litros por nido. El extracto también se puede aplicar con bombas aspersoras sobre los caminos y sobre las plantas de papayo revuelto con extracto de semillas de Neem (Azadirachta indica), durante las noches en que salen a defoliar las plantas de papayo recién transplantadas o en las primeras etapas de desarrollo. BIBLIOGRAFÍA CONSULTADA • Universidad Tecnológica del Choco. 2004. Hormiga Arriera. Biología, Ecología y Hábitos. Programa Nacional de Transferencia de Tecnología Agropecuaria. Subprograma de Manejo y Control de Hormiga Arriera (Atta y Acromyrmex spp) en Sistemas de Producción de Importancia Económica del Choco. 28 pág. •

CURRIE, C.R. ; SCOTT, J.A. ; SUMMERBELL, R.C.; MALLOCH, D. 1999. Fungus-growing ants use antibiotic-producing bacteria to control garden parasites. Nature 398: 701-704.

•

ESCOBAR, R.; NEITA, J.C.; MENA, G.2001. Caracterización de colonias de hormiga arriera en cuatro municipios del Depto del Chocó. Revista Institucional No 14 ( 13-20). Universidad Tecnológica del Chocó. Quibdo

•

ESCOBAR, R. et al. 2002a. Hormigas cortadoras de la Tribu Attini en sistemas productivos del Departamento del Chocó. Revista Institucional No 15 (35-41). Universidad Tecnológica del Chocó. Quibdo ESCOBAR, R. et al. 2002b. Deshechos de Atta colombica G. y su uso como bioabono en el Departamento del Chocó. Revista Institucional No 15. Universidad Tecnológica del Chocó (en preparación).

•

HART, A.G.; RATNIEKS, L.W. 2002. Waste management in the leaf-cutting ant Atta colombica. Behav. Ecol 13: 224-231

•

HÖLDOBLER, B.; WILSON, E.O., 1.996. Viaje a las hormigas. Una historia de exploración científica. Crítica. Barcelona. 270p.

CHAPULINES, LANGOSTAS Y GRILLOS ANTECEDENTES La aparición de éstos cortadores de follaje casi siempre se presenta en viveros no protegidos con malla antiáfidos o al aire libre. En el campo se presenta después del transplante durante los primeros 3 meses, y después de las primeras lluvias. También se ha observado su ataque durante la floración. CONTROL QUÍMICO El control después del transplante y antes de la floración se realiza aplicando al follaje cuantas veces sea necesario cada 7-10 días con: Cypermetrina, Lambda cyalotrina, Decametrina y

Bifentrina.

Se recomienda el uso los insecticidas del grupo de los piretroides arriba mencionados y complementar con cebos de carbarylo o sulfuramida, se recomienda aplicar de noche y repita cuando sea necesario, especialmente si llueve. Es muy importante mantener constante vigilancia a través de un programa de inspecciones periódicas, para la detección temprana de las plagas e iniciar el control antes de la dispersión total del problema.

Otros insecticidas que han dado buenos resultados en su aplicación son: Oxidemetón metílico (Aplicar 1.5 litros en 500-1000 litros de agua por hectárea). Insecticidas piretroides (Aplicar 0.8 litros en 500-1000 litros de agua por hectárea). Con todos los tratamientos agregar siempre un agente surfactante y adherentes. BIBLIOGRAFIA CONSULTADA • Boza, Fernando. 1978. Breve descripción del cultivo de la papaya y usos agroisndustriales. CARPC. Esparza. MAG. Costa Rica. • Carrillo, J. 1990. El cultivo comercial de la papaya. INTECAP. Guatemala. • Dennis, M.L.S. 1979. Algunas recomendacionmes generales para el cultivo de la papaya. Facultad de agronomía. Universidad de Costa Rica, Costa Rica. • Ebeling, Walter. 1959. Subtropical fruits pest. University of California. Div. of Ag. Sciences. U.S.A. • Enriquez, H. 1957. El cultivo de la papaya. Ministerio de Agricultura de Guatemala. • EPA, Tolerances on papaya. 1993. U.S.A. • Macmillan, R. 1994. Trip Report on Hawaiian Papayas in Tabasco. • Nakasone, H. 1994. Recommendatios for Hawaiian Papayas in Tabasco.

MINADOR DE LA HOJA Y DEL FRUTO (Liriomyza spp.) DESCRIPCIÓN Díptera: Agromyzidae. HUEVOS Los huevos son depositados uno a uno debajo de la superficie de las hojas. Su periodo de incubación esde 2-4 días. LARVAS Las larvas alcanzan unos 2 mm de largo, y son de color amarillo. Minan la hoja, dejando características minas en forma de serpentinas. Aparecen primero como un hilo y se ensanchan a medida que la larva crece. El estado larval dura entre 7 y 10 días. Las larvas maduras abandonan las minas y caen al suelo para empupar. En los frutos del papayo las larvas del minador dejan unas galerías que pueden llegar afectar hasta 2/3 de su longitud, lo que trae como consecuencia una afectación de la calidad del mismo y al acercarse a su madurez, la fruta queda con cicatrices de color gris y negro. PUPA Las pupas son de color marrón claro. A menudo las pupas también se forman sobre las hojas. ADULTO El adulto es una pequeña mosca de 2 mm, de color negro con tonos amarillos. DAÑOS Mina las hojas y los frutos del papayo. Los frutos expuestos al sol pueden aparecer lesionados, y solo en altas densidades de población puede existir pérdidas económicas de consideración. Es una plaga secundaria del cultivo del papayo, más bien aparece o llega a dañar plantas de papaya en frutos u hojas cuando cerca de la plantación existen cultivos de solanáceas como chile, jitomate o berenjena. COMPORTAMIENTO Y ECOLOGÍA En el caso de L. sativae, especie que es ampliamente conocida como plaga secundaria, se ha demostrado que se puede producir un brote de la misma a través del uso indiscriminado de

insecticidas como el Metomil, ya que L. sativae, al igual que otros minadores, normalmente están bien controlados por parasitoides, los cuales son eliminados por el insecticida. También tiene capacidad para desarrollar resistencia muy rápida a los insecticidas. L. sativae y el gusano alfiler (K. lycopersicella), suelen estar relacionados ecológicamente . Su principal daño es la defoliación de las hojas en alta densidad de población y la exposición así como el minado que hace en la epidermis de frutos no maduros y su disminución de la calidad. MANEJO MANEJO INTEGRADO DE LA PLAGA L. sativae es difícil de controlar una vez que está presente en poblaciones altas, tanto por su resistencia como por su hábito de minador que lo protege de las aspersiones. Los insecticidas de espectro amplio eliminan a sus enemigos naturales y es común que su densidad aumente después de una aplicación. Para evitar un brote se recomienda el uso de productos selectivos contra las otras plagas, para proteger la fauna benéfica. El bicultivo de papayo y frijol reduce en más del 50 % el nivel de ataque, lo cual podría ser empleado como una táctica preventiva. También el intercalado de maíz y frijol en el mismo surco (buscar uno de hábito trepador) de las barreras vivas, puede ser una excelente táctica de manejo integrado. Para controlar un brote ya iniciado hay dos alternativas: suspender todas las aplicaciones de productos de espectro amplio, o utilizar un producto de acción translaminar contra la cual L. sativae no ha presentado resistencia. En la mayoría de los casos la primera alternativa es la preferible. BIBLIOGRAFIA CONSULTADA

•

CATIE. 1990. Proyecto Regional de Manejo Integrado de plagas. Guía para el manejo de plagas del cultivo de tomate/ CATIE. Proyecto Regional MIP. Turialba, Costa Rica.: CATIE/MIP. 138 pág.

INSECTOS QUE ATACAN LOS TALLOS (IAT) BARRENADOR DEL TALLO (Homolopalpia dalera Dyar.) ANTECEDENTES Y DESCRIPCIÓN El gusano perforador del cogollo forma una red, debajo de la cual se alimenta hasta llegar al cogollo o a la fruta en desarrollo. La presencia de este insecto puede reconocerse, porque al remover un fruto, se nota en la parte que está en contacto con otro fruto o con el tallo, una trama de hilos finos mezclados con una especie de arena dentro de la cual hay siempre un gusano gris pardo o verde oscuro muy inquieto. DAÑOS Las plantas en crecimiento con vigor pueden rebasar el daño que el insecto hace en el tronco al labrar sus galerías, pero en los periodos en que el crecimiento se estaciona, por efectos del clima o el riego, las galerías penetran al interior del tallo y el daño puede ser tan serio como para detener el crecimiento del cogollo de la planta; el agua y los agentes que penetran hasta el interior pueden hacer morir la planta. Las larvas, además de dañar los frutos, pueden labrar galerías en el tallo cuando por alguna causa el crecimiento de las plantas se estaciona. Las larvas ocasionan gran daño a los frutos en todas las etapas de su desarrollo, bien porque los deforma o porque sus lesiones dan oportunidad a la entrada de infecciones fungosas. El daño llega a ser tan serio como para detener el crecimiento del cogollo, también el agua y algunos microorganismos al penetrar en las galerías provocan pudriciones que pueden causar la

muerte de la planta. Cuando las plantas tienen buen crecimiento pueden rebasar el daño que causa en el tallo. También en ocasiones ataca a los pecíolos de las hojas y a los pedúnculos de los frutos. Los adultos son pequeñas polillas de alas anteriores prolongadas triangulares y alas posteriores anchas. En la lucha contra este insecto puede utilizarse carbaril al 85 % o bien Imidachoprid inyectado en el sistema de riego del cultivo, en “Drench”, o bien en tratamientos de in¡versión de la raíz. BIBLIOGRAFIA CONSULTADA • Boza, Fernando. 1978. Breve descripción del cultivo de la papaya y usos agroisndustriales. CARPC. Esparza. MAG. Costa Rica. • Carrillo, J. 1990. El cultivo comercial de la papaya. INTECAP. Guatemala. • Dennis, M.L.S. 1979. Algunas recomendacionmes generales para el cultivo de la papaya. Facultad de agronomía. Universidad de Costa Rica, Costa Rica. • Ebeling, Walter. 1959. Subtropical fruits pest. University of California. Div. of Ag. Sciences. U.S.A. • Enriquez, H. 1957. El cultivo de la papaya. Ministerio de Agricultura de Guatemala. • EPA, Tolerances on papaya. 1993. U.S.A. • Macmillan, R. 1994. Trip Report on Hawaiian Papayas in Tabasco. • Nakasone, H. 1994. Recommendatios for Hawaiian Papayas in Tabasco.

INSECTOS QUE ATACAN LAS FLORES Y FRUTOS (IAFF) MOSCA DE LA FRUTA DE LA PAPAYA (Toxotripana curvicauda Gerst.) DESCRIPCIÓN Y BIOLOGÍA La hembra de este insecto mide 12 mm de largo, su ovopositor es curvado y más largo que el cuerpo, el cual presenta colores café y amarillo marcado con negro. La cabeza es tan ancha como el tórax, los ojos son prominentes y separados, el tórax es convexo, el abdomen pedunculado con seis segmentos definidos de los cuales el segundo es el más largo, las patas son delgadas y largas, las alas algo angostas redondeadas en el vértice. El insecto adulto T. Curvicauda Gerst. Es de forma alargada, color amarillo y alas transparentes. La hembra tiene un ovopositor curvo de longitud igual a la del cuerpo, con el cual perfora la corteza de los frutos para depositar sus huevos, de los que nacen las larvas, sin patas y de color amarillo crema. HUEVOS Los huevos son alargados, delgados, fusiformes con un extremo más amplio, miden de 2.5 a 3 mm de largo y su superficie es lisa y sin reticulaciones.La hembra los deposita en número de 10 o más.; oviposiciones frescas en frutos verdes se ven exteriormente como montículos de savia endurecida sobre la superficie del fruto. En algunas ocasiones hay evidencia de ovoposición infructuosa LARVAS Las larvas cuando completan su desarrollo adquieren un color blanquecino amarillento, siendo moderadamente gruesa con el extremo oral más agudo y ápodas, las larvas se alimentan primero de la masa central de la semilla pero al madurar la pulpa pasan a ésta, en ocasiones se encuentran larvas bajo la superficie del suelo. ADULTOS Después de 20 a 30 días las moscas emergen para aparearse y localizar frutas en las cuales ponen huevos. DAÑOS Y BIOLOGÍA

En una plantación con frutas de diferentes estados de desarrollo, una población abundante de moscas se encuentra presente con frecuencia, infestando frutos tiernos. La población natural de mosca prefiere las horas de la mañana de 6 a 9 horas y en la tarde de 15 a 18 horas. El insecto hembra inicia el daño cuando los frutos se encuentran bastante tiernos, ya que se observan bastantes deslechamientos, un gran porcentaje de frutos pequeños lesionados que logran crecer y llegar a su madurez fisiológica normal, presentan en algunos casos ensanchamiento celular, la misma parte del endocarpio es dura y no presenta las características organolépticas aceptadas. En frutos que han alcanzado su madurez fisiológica es casi nula la ovoposición de la mosca, es frecuente observar poblaciones naturales de mosca en árboles de Guazuma ulmifolia y Carica cauliflora. El daño a la fruta se produce cuando la mosca introduce su largo y curvado oviscapto, después que cuidadosamente ha reconocido el fruto. Inmediatamente después de observa emanación de finas gotas de látex en el lugar donde se realizó la oviposición; en ocasiones es común ver la mosca inmóvil, aprisionada de su oviscapto por el látex, que al estar en contacto con el aire se secó y aprisionó al ovopositor; el fruto puede sufrir de 10 a 20 lesiones, entonces la emanación del latéx continua, los frutos se chorrean y al secarse el látex por el contacto con el aire se torna de color negro, dando una mala apariencia a los frutos. El grupo de huevecillos son depositados directamente en la cavidad de las semillas inmaduras, luego las larvas se alimentan de áreas de embriones de las semillas, las larvas maduras hacen túneles cerca del exterior de la fruta, en esta etapa los frutos caen solos o las larvas salen al exterior para empupar en el suelo. Los tipos criollos de papaya presentan un endocarpio más grueso que el de variedades como la hawaiana por ejemplo, la variedad Maradol por ser de endocarpio grueso es menos afectada. La mosca no infecta a la fruta si no puede penetrar la pulpa (grosor del mesocarpio) para poner los huevos en la cavidad de la semilla y esto evita satisfactoriamente la ovoposición en la cavidad de las semillas. En los puntos de la fruta donde sucedió la oviposición y existe desarrollo de larvas en la parte interna, externamente se evidencian al transcurrir los días manchas amarillentas leves, dando apariencia de madurez localizada, donde más tarde aparecen patógenos como Diplodia sp, Fusarium sp. y la bacteria Enterobácter cloacae. Los insecticidas se deben aplicar en las últimas horas de la tarde y en las primeras de la mañana. Los frutos infestados de la planta maduran prematuramente, los frutos más pequeños son más susceptibles de oviposición efectiva, se recomienda eliminar de las plantas los frutos dañados y los que se encuentran tirados en el suelo, enterrarlos fuera de la plantación a 80 cm de profundidad y desinfectar el lugar con metomilo. Las larvas abandonan la fruta cuando se encuentra todavía en el árbol y se transforman en pupas dentro del suelo, se recomienda aplicar directamente al suelo, alrededor del tallo, un insecticida en forma de chorro para empapar el suelo; se debe efctuar remociones de hojas secas y cloróticas constantemente y enterrarlas. Bajo los 200 metros sobre el nivel del mar este insecto ya no es un problema. Las moscas de la fruta de la familia Tephritidae causan daño a los frutos al depositar sus huevecillos en la fruta. Posteriormente las larvas se alimentan dentro de la fruta provocando mayor daño. Las larvas se alimentan de la pulpa del fruto y de las semillas recién formadas, y al completar su desarrollo caen a la tierra para pupar. Unos días más tarde emergen los adultos. Los frutos dañados amarillean y caen. CONTROL CULTURAL Una práctica eficiente en la lucha contra esta mosca es la recogida de los frutos con síntomas, que se encuentran en el suelo y aquellos que aún permanezcan en las plantas, con el objetivo de quemarlos o enterrarlos. Cubriéndolos con una capa de cal, ya que el efecto del insecticida no llega a las larvas que permanecen en el interior del fruto. También se recomienda la recolección de frutos caídos de 50 a 100 cm, sembrar variedades de pulpa gruesa, mantener el cultivo libre de maleza. CONTROL QUÍMICO

Su presencia puede detectarse utilizando trampas con atrayentes, y una vez verificada la misma, deben realizarse aplicaciones cada 8-10 días de malathión 25 % PH o Dipterex 95 % PS, o bien Malathión 1000 E a razón de 0.5-1 ml/litro de agua. Las trampas se realizan utilizando 95 litros de agua, 4 litros de atrayente Bayer o Captor y 1 litro de Malathión, 250 ml de la mezcla se depositan en botellas de plástico de 1-2 litros, previamente perforadas, dejando una ventana cuadrada de 5 x 5 cm por donde entrarán las moscas, acondicionándole un hilo o alambre para colgarlo sobre los árboles.

CONTROL BIOLÓGICO Hormigas, pájaros, la avispa Aceratoneuromiya indica. BIBLIOGRAFIA CONSULTADA • Boza, Fernando. 1978. Breve descripción del cultivo de la papaya y usos agroisndustriales. CARPC. Esparza. MAG. Costa Rica. • Carrillo, J. 1990. El cultivo comercial de la papaya. INTECAP. Guatemala. • Dennis, M.L.S. 1979. Algunas recomendacionmes generales para el cultivo de la papaya. Facultad de agronomía. Universidad de Costa Rica, Costa Rica. • Ebeling, Walter. 1959. Subtropical fruits pest. University of California. Div. of Ag. Sciences. U.S.A. • Enriquez, H. 1957. El cultivo de la papaya. Ministerio de Agricultura de Guatemala. • EPA, Tolerances on papaya. 1993. U.S.A. • Macmillan, R. 1994. Trip Report on Hawaiian Papayas in Tabasco. • Nakasone, H. 1994. Recommendatios for Hawaiian Papayas in Tabasco.

GUSANOS DEL FRUTO (Heliothis zea (Boddie) y H. virescens (Fabricius) ANTECEDENTES Éstas dos especies dañan al papayo en México, Centro y Sudamérica. También atacan a otros cultivos como al jitomate (L. esculentus). Se encuentran en poblaciones mixtas, donde generalmente predomina H. zea. DESCRIPCIÓN HUEVOS Los huevos son depositados individualmente, tienen un diámetro de menos de 1 mm, son de color blanco al principio y muestran un anillo rojo obscuro o marrón a partir de las 24 horas. Se caracterizan por su forma esférica y por tener estrías que van desde la base hasta el ápice. Pueden ser confundidos con los del falso medidor, Trichoplusia, pero éstos son más aplanados y tienen estrías más finas. Los adultos son atraídos por las flores y frutos y, como consecuencia, los huevos se encuentran generalmente en las hojas terminales más cercanas a las flores e inmediatamente debajo de ellas. Los huevos tardan entre 2 y 5 días en eclosionar. LARVAS Las larvas de Heliothis se distinguen de otros géneros (tales como Spodóptera) por sus filas de espinas o setas en el dorso y por tener también numerosas setas mucho más pequeñas que cubren la piel. Esto es de gran ayuda en su identificación, dado que el color varía, desde verde o amarillo hasta rojo, marrón o negro, aunque usualmente se presentan rayas. El estado larval tiene una duración de 14 a 28 días, según las condiciones ambientales. El tamaño de una larva de último estadío es variable, aproximadamente de unos 35-40 mm de longitud. ADULTOS

El adulto de H. virescens mide 27-35 mm con alas extendidas. Las alas delanteras son de color verde amarillo pálido a castaño con tres rayas oblicuas, las alas traseras son plateadas, con márgenes más obscuros. Los adultos De H. zea miden unos 35-40 mm con alas extendidas, las delanteras son de color marrón claro a verdoso, o marrón con marcas transversales más obscuras. Alas traseras pálidas, oscurecidas en los márgenes. DAÑOS Las larvas perforan los frutos, los cuales se contaminan por la presencia de uno o más de ellas, sus heces y/o mudas. Los frutos dañados generalmente se pudren y caen de la planta en menos de dos semanas. COMPORTAMIENTO Y ECOLOGÍA Las dos especies de Heliothis son plagas generalistas, que dañan los botones florales, flores y frutos de diversas plantas y cultivos, tales como algodón, maíz y tabaco. Las fuentes de infestación para el papayo probablemente son otros cultivos cercanos, según el patrón espacial y temporal de siembra. Se ha demostrado que los adultos de Heliothis pueden volar a distancias considerables movilizándose hacia el cultivo cuando se inicia la etapa de floración. Las larvas de primer estadío se mueven a los frutos más cercanos, y en su ausencia, perforan los botones y las flores. A veces también llegan a taladrar el tallo. Prefieren frutos verdes y, generalmente completan el ciclo larval en un solo fruto, aunque las larvas pequeñas son capaces de afectar varios de ellos. Cuando está madura, la larva baja al suelo en donde pasa al estado de pupa. La actividad del adulto (vuelo, alimentación con néctar, acoplamiento y ovoposición) se concentra a la hora de oscurecer y en la noche. La presencia de adultos de Heliothis se registra durante todo el año, con picos poblacionales en mayo-junio y septiembre-enero. Se han registrado niveles de mediana a alta resistencia a organofosforados y carbamatos de Heliothis procedentes de Centroamérica. MANEJO INTEGRADO DE LA PLAGA En California se encontró que el uso de Bacillus turingiensis Berliner (Bt) var. Kurstaki (0.56 kg de ingrediente activo/Hectárea) combinado con liberaciones masivas del parasitoide de huevos Trichogramma pretiosum Riley (aproximadamente 55, 000/Hectárea) cada 3 a 4 días, de los 35 a los 120 días después del transplante), lo cual da un control aceptable y permite que durante el periodo reproductivo del papayo (floración-amarre de frutos) se proteja la columna floral para un alto rendimiento. La ventaja en el uso de Bt y Trichogramma es que no provocó brotes de plagas secundarias, dado que el Bt no causa mortalidad a la fauna benéfica. Mientras que cuando se usa el Metomil provoca brotes de plagas secundarias. La combinación de Bt y Trichograma funciona a pesar de que ninguno de los dos ejerce un control suficiente cuando se utiliza solo. Cuando no se dispone de Trichograma se puede llegar a potenciar al Bt utilizando un insecticida químico convencional al 25 o 50% de su dosis normal. Un buen monitoreo es crítico para la eficacia de cualquier insecticida contra Heliothis, ya sea químico o biológico. Esto es necesario para sincronizar las aplicaciones con la aparición de las larvas del primer estadío. Una vez que las larvas hayan penetrado los frutos el control se hace más difícil y costoso. BIOLOGÍA Y PARASITISMO Se ha observado que durante períodos de temperaturas altas, los huevos eclosionan dentro de tres días después de la oviposición y se infiltran en los frutos en 3 días más. Cuando la larva está por nacer, en cualquier momento se puede ver (con la ayuda de una lupa) su cabeza negra a través del huevo translúcido. En caso de que el huevo esté parasitado, muestra un

color negro más uniforme. Se recomienda que durante los muestreos se ignoren los huevos parasitados y, programar una aplicación inmediatamente si los huevos muestran las cabezas de las larvas o si hay larvas recién nacidas. Si los huevos todavía están totalmente blancos, color que muestran durante las primeras 24 horas, recomiendan no aplicar insecticida hasta volver a muestrear dos días después. UMBRAL ECONÓMICO Los índices para aplicaciones químicas son: muestreos al azar de 60 plantas, identificarla flor recientemente abierta, las que han tirado sus pétalos y frutos de papaya desde 4.5 cm hasta 12 cm de longitud, y examinar su hoja inferior siguiente. Revisar haz y envés, sin cortar la hoja, registrar la cantidad de huevos de Heliothis encontrada. Al encontrar 4 huevos o más en 30 hojas, se debe volver a muestrear a los 4 días. Al encontrar más de 4 huevos y/o larvas recién nacidas por planta se debe de realizar las aplicaciones de control químico. CONTROL QUÍMICO REQUISITOS DE LAS APLICACIONES Para un buen control debe obtenerse una cobertura adecuada de las hojas, tallo y fruto. Comienze la aplicación en la floración, dirigiendo la atomización a las flores asegurándose de que se cubra adecuadamente las frutas en desarrollo en la corona, cubrir la fruta desde el pedúnculo hasta el ápice floral. Este tratamiento puede aplicarse en combinación con los fungicidas. Agregar siempre un agente humectante. Se recomienda la aplicación de Bacillus thuringensis var. Kurstaki, así como el uso de insecticidas del grupo de los piretroides. BIBLIOGRAFÍA CONSULTADA

•

CATIE. 1990. Proyecto Regional de Manejo Integrado de plagas. Guía para el manejo de plagas del cultivo de tomate/ CATIE. Proyecto Regional MIP. Turialba, Costa Rica.: CATIE/MIP. 138 pág.

GUSANOS SOLDADOS (Spodoptera spp.) ANTECEDENTES Se les conoce, en general como gusanos soldados y todos ellos son capaces de atacar al papayo, con preferencia al follaje y los frutos. HEMBRAS Las hembras ponen numerosos huevos, recubriéndolos con escamas, lo que da a sus oviposiciones el aspecto de una pelusa. LARVAS Las larvas jóvenes son gregarias y se alimentan royendo la superficie de la hoja, produciendo a veces esqueletización de la misma. Pasan de 5-7 estadíos, llegando a medir entre 25 y 40 mm. Presentan bandas de color obscuro a lo largo del cuerpo y algunas tienen diseños con manchas triangulares. Son sedosas al tacto. Empupan en el suelo. ADULTOS Los adultos son de color castaño y alas traseras blancas, con una longitud entre 28-50 mm. CLASIFICACIÓN Y DIVERSIDAD DE ESPECIES Existen cuatro especies reportadas y son: S. latisfacia, S. sunia, S. eridania y S. exigua. A continuación se describe sus principales características de cada especie:

Spodoptera latisfacia (Walk). Sus larvas son cortadoras, pero más que todo actúan como defoliadoras y destructoras de frutos, pudiendo causar severos daños a éstos.

Spodoptera sunia (Guen). Puede causar defoliaciones y destrucción de frutos cuando sus

poblaciones son altas. Spodoptera eridania (Cram). Ocasionalmente pueden actuar como cortadores, pero su daños es sobre todo en la defoliación y perforaciones en los frutos. Spodoptera exigua Hubn. Es importante en las costas del pacífico de países como el Salvador y Centroamérica. Las larvas en fase gregaria pueden causar serias defoliaciones en el cultivo. COMPORTAMIENTO Y ECOLOGÍA Los gusanos soldados del complejo Spodoptera son plagas generalistas que atacan casi cualquier especie de planta y cultivo, con preferencia por las dicotiledóneas. Las fuentes de infestación son otros cultivos y frecuentemente las malezas como el bledo o quelites (Amaranthus spinosus) y la verdolaga (Portulaca spp.). MANEJO MANEJO INTEGRADO DE LA PLAGA Se recomienda la misma combinación de Bt con dosis media o la cuarta parte del insecticida recomendados para Heliothis y K. lycopersicella, para el combate de los gusanos de Spodóptera. En Florida se observó que en cultivos como el jitomate al eliminar de los campos el Amaranthus, las larvas de S. exigua pasaban a las plantas del jitomate, y al dejar la maleza, se quedaban en éstas. Esto sugiere el posible uso de la maleza como cultivo trampa. CONTROL BIOLÓGICO Los gusanos soldados tienen enemigos naturales que frecuentemente regulan sus poblaciones, haciendo que su categoría como plaga sea solo intermedia y, aún de poca importancia. Entre estos tenemos a los parásitos ovífagos, Trichogramma spp., parasitos larvales como Apanteles spp., Euplectrus sp., Chelonus sp., y Ophion sp. Entre los parásitos larvo-pupales están Brachymeria sp. y Spilochalchis sp. Otros parásitos incluyen a los taquínidos como Whintemia spp., existiendo también depredadores como las avispas Polistes y organismos patógenos como los hongos Nomuraea rileyi y Beauveria bassiana. CONTROL QUÍMICO COMBINADO Las poblaciones de gusanos soldados deben ser monitoreadas semanalmente desde el momento en que se establece la plantación, examinando las hojas y buscando oviposiciones o larvas. Las infestaciones densas en la etapa de establecimiento pueden ameritar una aplicación, con la opción de usar B. thuringiensis (Bt) cuando se detectan poblaciones de larvas jóvenes, o mezclando ese mismo producto con dosis bajas de un insecticida específico para larvas. BIBLIOGRAFÍA CONSULTADA

•

CATIE. 1990. Proyecto Regional de Manejo Integrado de plagas. Guía para el manejo de plagas del cultivo de tomate/ CATIE. Proyecto Regional MIP. Turialba, Costa Rica.: CATIE/MIP. 138 pág.

PIOJO HARINOSO DE LA PAPAYA (Paracoccus marginatus y Planococcus spp.) Identificación y daños El piojo harinoso común de la papaya (Paracoccus marginatus) y el (Planococcus spp.) o piojo harinoso de la papaya está conformado por filamentos cerosos, cortos y gruesos que cubren el cuerpo. Se alimentan de la savia de la planta y de los frutos. Ataca el follaje y frutos, provocando clorosis y enrollamiento de los bordes foliares. En los frutos causa escurrimiento de látex, presentando éstos mala apariencia. En plantas pequeñas, y cuando las plantaciones son abundantes en plantas adultas, causan un amarillamiento del follaje y propician la caída de las hojas. Las plantas infestadas presentan un aspecto algodonoso.

Control Biológico Crisopha sp. y Chilocorus cacti, ambos enemigos naturales de la cochinilla. Control Químico Para su control se recomiendan insecticidas sistémicos, piretroides sintéticos, así como la mezcla con algún repelente a base de ajo o Neem (Azadirachta induca), pero sobre todo que se rompa la tensión superficial para que los productos penetren hasta el insecto y poder ejercer un buen control. BIBLIOGRAFIA CONSULTADA • Boza, Fernando. 1978. Breve descripción del cultivo de la papaya y usos agroisndustriales. CARPC. Esparza. MAG. Costa Rica. • Carrillo, J. 1990. El cultivo comercial de la papaya. INTECAP. Guatemala. • Dennis, M.L.S. 1979. Algunas recomendaciones generales para el cultivo de la papaya. Facultad de agronomía. Universidad de Costa Rica, Costa Rica. • Ebeling, Walter. 1959. Subtropical fruits pest. University of California. Div. of Ag. Sciences. U.S.A. • Enriquez, H. 1957. El cultivo de la papaya. Ministerio de Agricultura de Guatemala. • Macmillan, R. 1994. Trip Report on Hawaiian Papayas in Tabasco. • Nakasone, H. 1994. Recommendatios for Hawaiian Papayas in Tabasco.

GRUPO III.- NEMATODOS QUE ATACAN AL CULTIVO Introducción Son organismo pequeños que pueden ser responsables de grandes pérdidas en plantaciones comerciales de papayo, ya que atacan los pelos absorbentes de la raíz reduciendo su actividad para absorber agua y nutrientes del suelo, los síntomas que causan son: Nódulos o agallas de raíces, lesiones necroticas, ramificaciones anormales. Los géneros más importantes por el daño que causan en este cultivo son: en nematodo reniforme Rotylenchulus reniformes Linford y Oliveira y el agallador de raíces Meloidogyne Spp. 3.1) Nematodo Reniforme (Rotylenchus reniformes Lindford y Oliveira). Historia del parásito. Fue observado por primera vez en raíces de plantas de caupi que se cultivaban en un campo de piña en las Islas de Hawai (Linford y Oliveira, 1940). Las observaciones de campo y los experimentos realizados en invernaderos, demostraron que este parasito es capaz de infestar las raices de 65 vegetales diferentes pertenecientes a 30 familias (Linford y Yap, 1940).

Entre los cultivos más comunes que pueden atacar este nematodo se incluyen a la piña, la remolacha, el bretón, coliflor, col, calabacita, pepino, zanahoria, lechuga, frijol, rábano, berenjena, papa, papayo y maíz (Christie, 1974). Descripción Este nematodo es de tamaño pequeño, y por lo tanto no recorre grandes distancias, más que unas cuantas pulgadas en su tiempo de vida (Sivakumar y Seshadri, 1972). Solamente las hembras son parásitas, no se ha observado que los machos penetren en las raíces, la hembra infecciosa es, estrictamente hablando, un adulto con la vulva formada, pero no las dos ramas del sistema reproductor relativamente subdesarrolladas. La copulación no tiene lugar sino hasta que la hembra ha penetrado en la raíz y el cuerpo ha comenzado a agrandarse (Christie, 1974). La producción promedio de huevos, es cuando menos de 100-120 huevecillos y se encuentran aglomerados en una matriz gelatinosa, los estados juveniles miden < 500 µm (Linford y Oliveira, 1940). Posteriormente las hembras juveniles, llegan a adultos y penetran a la corteza de la raíz y se vuelven sedentarias, la porción del cuerpo que permanece fuera de la raíz se alarga y se forma como un pequeño riñón, de aquí el nombre de reniformes (Linford y Oliveira, 1940). Importancia y distribución Los nematodos reniformes son muy importantes en el cultivo del papayo y son un serio problema donde anteriormente hubo cultivos de piña (Christie, 1974). Los nematodos reniformes tienen una gran cantidad de hospedantes anteriores, que pueden ser cultivos comunes, asi como malezas (Cohn y Duncan, 1990). Daños Estos nematodos se alimentan cerca del floema de las raices de la papaya, induciendo la formación de células gigantes. Estas células ocasionan una alta actividad metabolica y compiten con otras partes de la planta por alimento y nutrientes (Hine et al., 1965). Los nematodos tambien pueden alimentarse en la corteza de la raíz y causan un rompimiento mecanico de las celulas corticales, asi proveen de sitios convenientes para el ataque de hongos. Los frutos producidos en plantas infectadas son más pequeños que lo normal y pueden ser ligeramente insipidas (Linford y Yap, 1940). Fuera de las Islas de Hawai, se ha encontrado al nematodo reniforme en Puerto Rico, Sudáfrica, Ghana, Pakistan y Estados Unidos (Georgia, Louisiana y Florida) (Christie, 1974). Síntomas Los síntomas que aparecen es una clorosis de las hojas y puede ser de moderada a severa y que impiden el pleno desarrollo de la planta (Cohn y Duncan, 1990). Los marchitamientos pueden ocurrir durante los periodos de mayor transpiración, causando estrés en la planta, y si estas plantas llegaran a producir, tendrían frutos pequeños (Linford y Oliveira, 1940). Después las hembras al llegar al estado adulto penetran la corteza de la raíz y se vuelven sedentarias (Christie, 1974). Ciclo de vida Por ser de tamaño diminuto estos no atraviesan grandes distancias y son diseminados principalmente por cultivos contaminados o por el agua de riego (Linford y Oliveira, 1940).

Después las hembras al llegar al estado adulto penetran a la corteza de la raíz y se vuelven sedentarias (Christie, 1974). Control Se recomienda evitar plantar en sitios infestados por este nematodo, o en campos donde anteriormente se cultivo piña (Linford y Oliveira, 1940). También se debe realizar una fumigación del suelo antes de la plantación, para reducir la población de nematodos y tener como resultado una mejoría en su crecimiento y productividad (Lange, 1960). Algunos nematicidas sistémicos comunes prometen un buen desarrollo de la papaya pero son fitotóxicos (Ayala et al., 1971). Bibliografía Consultada • Ayala, A., Acosta, N. And Adsuar, J.A. 1971. A preliminary report on the response of Carica papaya L. to foliar application of two systemic nematicidas. (Abstr.) Nematrópica 1:10. • Conh, E. And Duncan, L.W. 1990. Nematode parasite of subtropical and tropical fruit trees. Pages. 347-362. In: Plant parasitic. Nematodos in subtropical and tropical agricultura. M. Luc. R.A. Sikora, and J. Bridge, Eds. C.A.B. internacional Mycol. Inst. Wallingford, England. • Christie, R.J. 1974. Nematodos de lso vegetales: su economía y control. Ed. Limusa, México, D.F. 275 p. • Hine, R.B., Holzman, O.V. and Raabe, R.S. 1965. Diseases of papaya innHawaii. Agric. Exp. Sta. Univ. of Hawaii. Bull. 136. p. 26. • Lange, A.H. 1960. The effect of fumigation on the papaya replant problem in twoHawaiian soils . Proc. Am. Hortc. Soc. 75: 305-312. • Linford, M.B. and F. Yap. 1940. Some host plants of the reniform nematode in Hawaii. Proc. Helmth. Soc. Wash. 7(1):42-44. • Lindford, M.B. and Julliete, M. Oliveira. 1940. Rotylenchus Reniformis, Nov. Gen, nov. Sp., a nematodo parasite of roots. Proc. Helmith. Sopc. Wash. 7(1):35-42. • Sivakumar, C.V., and Seshadri, A.R. 1972. Histopatology of infection by the reniform nematode, Rotylenchus reniformis Lindford and Oliveira, 1940 on Castor, Papaya and tomato. Indian. Jour. Nematol. 2:173-181.

3.2.- Nemátodos agalladores de raíces (Meloidogyne spp., Tylor y Passer, 1983). Introducción Son pequeños gusanos, generalmente de forma alargada, viven en el suelo y ocasionan grandes daños, principalmente a las plantas pequeñas en los viveros, aunque también afecta a las plantas adultas. Antecedentes En 1877 se hizo la primera observación de estos nematodos en Río de Janeiro, Brasil, por Jobert, al observar árboles de café enfermos encontró raíces fibrosas con numerosas agallas, y

que estos eran periformes, puntiagudas y frecuentemente encorvadas. También tenían huevos elípticos, encerrados en membranas hialinas que contenían pequeños animales vermiformes (Taylor y Sasser, 1983). Diez años después, Goldi en 1887 investigó el mismo problema y publicó un documento de 105 páginas acerca de la enfermedad de los cafetales. El señalo al nematodo del nódulo de la raíz Meloidogyne exigua como la causa de la enfermedad y como la especie característica de un nuevo genero (MacSorley, 1981). Posteriormente, la especie y el género fueron sinonimizados primero con Heterodera marioni, hasta que fueron restablecidos por Chitwood en 1949, quien también describió o redescribió las cuatro especies más comunes y ampliamente distribuidas: M. incógnita, M. javanica, M. arenaria y M. hapla (Tylor y Sasser, 1983). El numero de fitonematologos creció y consecuentemente aumentó el de publicaciones acerca de Meloidogyne spp. (Sasser, 1977). Descripción La mayoría de hembras de Meloidogyne tienen cuerpo periforme, y su eje central coincide con una línea recta desde el ano hasta el estilete y la longitud promedio de las hembras adultas, fluctúa alrededor de 0.44 a 1.3 mm y el ancho promedio entre 0.325 a 0.7 mm (Taylor y Sasser, 1983). También existen hembras de algunas especies que son ovales con una protuberancia posterior y cuellos que están en un ángulo con el eje del cuerpo (Cohn y Duncan, 1990). Importancia, distribución Son de gran importancia debido a que causaron severas alteraciones en las raíces impidiendo el pleno desarrollo de la planta, e incluso la muerte de plántulas en suelos arenosos (McSorley, 1981). Daños Los daños que causan en la raíz son la formación de células gigantes y agallas. También se observan efectos físicos como el acortamiento y deformación de las raíces, así como disminución de la eficiencia radical, que ocasiona una paralización del crecimiento y marchitez en climas secos (Taylor y Sasser, 1983). Los nematodos agalladores de la raíz presentan una distribución mundial. Esencialmente son organismos de climas calientes, por lo que son más importantes en las regiones donde los veranos son largos (Christie, 1974). Hay informes que indican que M. hapla se adapta a las condiciones frías del norte de los Estados Unidos y en el sur de Canadá, en el Norte de Europa y en el Norte de Asia (Taylor y Sasser, 1983). En la zona tórrida las especies que se reportan y que son más comunes son M. incognita, y M. javanica, son mucho más comunes en Sudamérica, África, Australia y el sur de Asia (Cohn y Duncan 1990). Síntomas Los síntomas ocasionados por los agalladores son similares a los realizados por los nematodos reniformes que ya fueron descritos (McSorley, 1981). Las raices de las papayas atacadas por estos nematodos, muestran varios grados de daños, observándose agallas y formación de células gigantes, o ligeros hinchamientos, así como suspensión de elongación adicional (Cohn y Duncan, 1990).

Los síntomas en la parte aérea de las plantas afectadas muestran clorosis aguda y las hojas caen prematuramente, muchas plantas mueren, principalmente en los periodos de sequía. Ciclo de vida Cuando dependen de su propio poder de locomoción, es lenta la propagación de los nematodos agalladores se debe únicamente al movimiento de las larvas, antes de entrar a las raíces (Taylor y Sasser, 1983). En la mayor parte de los casos, estos organismos se propagan por las actividades humanas; tales como la siembra de material infestados. Las masas de huevos tienden a encajarse profundamente en las estructuras de esta clase y no es probable que se mueran por el tratamiento, secado o almacenado (Christie, 1974). En las raíces de los transplantes, de todas clases, las plantas de los almácigos, en los desechos de los lugares de almacenamiento y de las plantas de empacado, en la tierra de los campos infestados que se transporta en los implementos de labranza (Hine et al., 1965). El agua de riego puede ser un medio importante de diseminación, si el sistema se encuentra dispuesto de modo que el agua escurra de un lote a otro, o de que se regrese de los campos a los canales principales (Mc Sorley, 1981). Manejo Control Cultural Para estos agalladores se recomienda el barbecho y cultivo en seco, además de rotación de cultivos por lo menos de 2 o 3 años obteniéndose un control regular (Taylor y Sasser, 1983). En la lucha contra esta plaga es muy importante el empleo de medidas fitotécnicas como son: buena preparación del terreno antes de sembrar (removiéndolo bien y manteniéndolo libre de malas hierbas a fin de eliminar los nemátodos por desecamiento); rotación de cultivos; desinfección de los suelos utilizados como substratos en los viveros y desinfectar los aperos de labranza cuando se cambien de un huerto a otro, ya que éstos patógenos se diseminan junto a las partículas de suelo adheridos a ellos, al hombre, a los animales y al agua de riego. Control químico Mediante la fumigación al suelo antes de la plantación es efectivo contra los nematodos agalladores (Lange, 1960). Existen insecticidas granulados de acción sistémica y de contacto que disminuyen la población de nemátodos y se aplican fácilmente seguidos de un riego. En los estudios básicos sobre control de nemátodos se menciona la necesidad de determinar por muestreo, identificación y conteo de nemátodos. El control de éstos debe de hacerse antes de la siembra, por lo que no existe ningún tratamiento aprobado para la plantación establecida. Los nemátodos del tipo que provocan nódulos en la raíz Meloidogyne sp. causan daños severos a las raíces provocando un crecimiento raquítico y posible entrada de Phytopthora sp.; Una vez que los nemátodos han penetrado a las raíces, su control es imposible. La fumigación del suelo con Vapam es probablemente el mejor curso de acción. Esta fumigación debe realizarse 15 días antes de la siembra de la semilla en el sustrato a utilizar para los contenedores del vivero y como último paso de la preparación de suelos, consiste en hacer una solución de 7-8 g por litro de agua y aplicarlo cada m2 de suelo sobre los lomos o lomillos en donde se va a sembrar. Bibliografía Consultada

•

• • • • •

•

Conh, E. and Duncan, L.W. 1990. Nematode parasite of subtropical and tropical fruit trees. Pages. 347-362. In: Plant parasitic. Nematodos in subtropical and tropical agricultura. M. Luc. R.A. Sikora, and J. Bridge, Eds. C.A.B. internacional Mycol. Inst. Wallingford, England. Christie, R.J. 1974. Nematodos de lso vegetales: su economía y control. Ed. Limusa, México, D.F. 275 p. Hine, R.B., Holzman, O.V. and Raabe, R.S. 1965. Diseases of papaya innHawaii. Agric. Exp. Sta. Univ. of Hawaii. Bull. 136. p. 26. Lange, A.H. 1960. The effect of fumigation on the papaya replant problem in twoHawaiian soils . Proc. Am. Hortc. Soc. 75: 305-312. McSorley, R. 1981. Plant parasitec nematodes associated with tropical and subtropical fruit. Univ. Fla. Agric. Exp. Sta. Bull. 823. Taylor, A.L. y Sasser, I.N. 1983. Biología, identificación, y control de los nemátodos del nódulo de la raíz. Proyección internacional de Meloidogyne. Una public. Coop. entre el Depto. De Fitopatología de la Universidad del Estado de Carolina del Norte y la Agen. De E.U. para el desarrollo Inter.. Imp. De E.U. Sasser, J.N. 1977. Worlwide disemination and importante of the root-knot nematodos Meloidogyne spp. Jour. Of Nematology. 9:283.

Grupo 4.- Moluscos que atacan al cultivo del papayo. Aquí encontramos a dos especies: a los caracoles y a las babosas, los cuales tienen cierta preferencia a los frutos, dañando la epidermis de éstos (caracoles) y destruyendo el follaje (babosas). 4.1 Babosas (Diplosolenodes occidentale, Vaginulus occidentalis y Veronicella occidentalis ) INTRODUCCIÓN La información sobre aspectos de biología, ecología y control de babosas en México y otros países es sumamente escasa, probablemente debido a que ocurren como plagas de manera muy ocasional y localizada tanto en costa, sierra y selva. Es importante tener en cuenta que algunas de las técnicas indicadas tienen que ser probadas previamente según la especie de babosa que se tenga, las características climáticas y edáficas, y la propia realidad de cada zona, antes de ser recomendadas a los agricultores afectados.

CLASIFICACIÓN DE LA CLASE GASTRÓPODA La posición taxonómica de esta Clase según CABI (2003) es la siguiente: Dominio: Eukaryota Reino: Metazoa Phylum: Mollusca Clase: Gastropoda Las babosas son moluscos de la clase Gastrópoda, es decir, son animales invertebrados de cuerpo blando no segmentado. El término Gastrópoda se origina de los vocablos gastro (estómago) y podos (pies), los mismos que hacen referencia a la forma de desplazamiento de estos animales que literalmente arrastran su “estomago”. Los gastrópodos son excelentes representantes de la biodiversidad con cerca de 35,000 especies vivientes descritas y 15,000 especies fósiles. Estos animales son encontrados en todo el mundo, habitando el mar, cuerpos de agua dulce y en tierra, desde los desiertos más secos, frías montañas y regiones templadas hasta los trópicos y sub-trópicos, pero llegan a ser plagas principalmente en los lugares con climas húmedos y calurosos. Las babosas son gastrópodos que carecen de caparazón o lo tienen extremadamente reducido. Las babosas terrestres presentan respiración pulmonar para lo cual requieren de un poro

respiratorio que deja ingresar el aire hasta alcanzar al pulmón. Adicionalmente, tienen dos tentáculos cefálicos y dos labiales.

4. DAÑOS Las babosas fitófagas son por lo general polífagas, teniendo preferencias por determinadas especies vegetales. La boca de estos animales está conformada por una serie de dientes que en conjunto son llamados Rádula, con la que raspan y dañan el tejido vegetal en las diferentes partes u órganos de las plantas. 5. BIOLOGIA & ECOLOGIA Estos organismos están compuestos por un alto porcentaje de agua, por lo que son muy propensos a la desecación por el sol o por condiciones de baja humedad relativa. Por estas razones prefieren alimentarse de noche o en días nublados cuando las temperaturas bajan y los jardines o cultivos están húmedos, ya sea por un riego o por una lluvia. Sus huevos gelatinosos, colocados en grupos de 40 -100, pueden ser encontrados en el suelo debajo de rocas e incluso en macetas. En condiciones de baja humedad tienden enterrarse en el suelo para protegerse de la desecación. 6. ESPECIES DE IMPORTANCIA AGRÍCOLA A nivel internacional existen algunas especies de babosas fitófagas que ocasionan problemas ya sea en jardines, huertas o campos de cultivo; sin embargo, sólo una ha sido identificada a nivel de especie gracias al trabajo del SENASA Jaén, el Laboratorio de Sanidad Vegetal (SENASA) y la UNMSM, de Perú. 6.1. Diplosolenodes occidentale 6.1.1. POSICIÓN TAXONÓMICA Familia: Veronicellidae Otros nombres usados (sinónimos):

Vaginulus occidentalis Veronicella occidentalis

6.1.2. RANGO DE HOSPEDEROS Diplosolenodes occidentale es una especie polífaga, cuyo rango de hospederos según CABI (2003), consta de las siguientes especies: Brassicaceae (cruciferas), Capsicum annuum, Lactuca sativa, Lycopersicon esculentum y Phaseolus spp. 6.1.3. DISTRIBUCION GEOGRÁFICA Costa Rica, Jamaica, Puerto Rico y Perú. En este último, muestras provenientes de Jaén y enviadas por el SENASA de esta localidad al Laboratorio de Sanidad Vegetal (SENASA) en marzo del 2000, fueron identificadas como Vaginulus occidentalis por el Dr. Pedro Huamán de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos. 6.1.4. SITUACIÓN ACTUAL Esta especie presentó altas poblaciones en el año 2000, infestando cultivos de yuca, papaya y leguminosas. Sin embargo, sólo se trató de un problema ocasional y actualmente ocurre en niveles sub-económicos. En la literatura nacional e internacional, la información sobre esta especie es muy escasa, por lo que sería recomendable realizar la investigación (Universidades cercanas) correspondiente a su biología y ecología para un mejor entendimiento de la plaga y la formulación de los métodos de control más apropiados.

7. CONTROL DE BABOSAS 7.1. CONTROL CULTURAL Debido a que el cuerpo de estas plagas contienen mucha agua, ellos son muy susceptibles a la desecación. El suelo debe ser arado con más intensidad que la normal, a fin de que los huevos y a los individuos que se entierran en el barro sean expuestos a la radiación solar y a sus predatores. No se debe exagerar con el agua de riego porque ello puede originar condiciones adecuadas de alta humedad – en el microclima del cultivo – para el desarrollo de estas plagas. En ese sentido, es ideal el uso de riego por goteo, por ejemplo. 7.2. CONTROL MECÁNICO Recojo Manual.- Esta medida es muy efectiva (también para caracoles) particularmente en huertos pequeños o vergeles. La mejor hora para colectar las babosas es en las primeras horas de la noche por lo que es necesario llevar linternas u otras fuentes de luz. Las babosas colectadas deben ser eliminadas colocándolas en un deposito con kerosene o agua con detergente. Barreras.-Los agricultores y jardineros, particularmente para proteger áreas pequeñas, también pueden colocar alrededor de las plantas susceptibles, un “anillo” con materiales abrasivos, tales como cáscara de huevo molida, arena, aserrín, tierra de Diatomeas, pelos o ceniza. Estos materiales tienen que ser mantenidos secos para que puedan ser efectivos en repeler a las babosas, por lo que después de una lluvia el material tiene que ser aplicado nuevamente. Si se quieren tener barreras más permanentes para plantas muy valiosas, se pueden colocar cilindros de plástico con el fondo cortado que rodeen a la planta. Una de las barreras más efectivas, sin embargo, es el uso de láminas de Cobre, ya que ésta trabaja seca o húmeda. Cuando las babosas (y caracoles) hacen contacto con el Cobre, hay una reacción tóxica que los repele. El ancho mínimo de estas barreras de Cobre debe ser de dos pulgadas. 7.3. CONTROL ETOLÓGICO Uso de Cebos Tóxicos.-Las babosas (y también los caracoles) son atraídas a sustancias químicas relacionadas al proceso de fermentación, razón por la cual la cerveza es uno de los cebos más populares; sin embargo, las distintas marcas de cerveza pueden ser más o menos eficientes, por lo que es necesario efectuar algunas pruebas simples con la especie de babosa problema. Se han hecho experimentos al respecto en otros países encontrando diferencias en marcas de cervezas en relación con su mayor o menor grado de atracción a estos animales. También existe información sobre el uso de leche y frutos en proceso de descomposición para atraer a las babosas. La cerveza o la leche deben ser colocadas en recipientes, como latas de mediano tamaño vacías, que pueden estar enterrados (A) o sobre el suelo (B), pero en ambos casos la altura del borde superior del recipiente con respecto al nivel del suelo debe de ser de 1.5 a 2.5 cm, de manera que la actividad predadora de especies de Carabidae no se vea afectada; es decir, si las trampas son colocadas con su borde (superior) al nivel del suelo, estaría actuando como una trampa de caída para diferentes moluscos y artrópodos, entre ellos insectos benéficos como los Carabidae. En las zonas donde Calosoma spp. u otras especies grandes de Carabidae son predominantes se recomienda emplear la altura de 2.5 cm; en zonas donde Chlaenius spp. u otras especies de Carabidae menores son predominantes se recomienda 1.5 cm, y si ocurren distintas especies de Carabidae sin una predominancia clara de alguno de los grupos mencionados, entonces se puede usar simplemente la altura de 2 cm. A estas alturas, las babosas no

tienen problemas para arrastrarse y subir por el borde del recipiente para luego caer en las trampas. En épocas de lluvias frecuentes es importante colocar una tapa encima del recipiente a manera de techo, ya sea con palitos o alambres, de tal manera que se deje un espacio para el ingreso de las babosas. Los recipientes tienen que ser chequeados todas las mañanas muy temprano para eliminar las babosas capturadas. En los últimos años un nuevo producto ha sido liberado al mercado y está recibiendo las críticas de los agricultores orgánicos. Los cebos son hechos con Fosfato de Fierro, sustancia que disminuye las poblaciones de babosas sin afectar a mascotas, aves y humanos. Los científicos aún no están completamente seguros de como esta sustancia afecta a las babosas, pero piensan que al parecer es un inhibidor de la alimentación. Plantas repelentes.-Ciertas plantas repelen a las babosas, entre las cuales tenemos a los ajos, menta, lechuga roja, col roja y girasol, entre otras. Estas especies vegetales parecen ser menos atractivas a la infestación de las babosas, y pueden ser plantadas en los bordes de los jardines o cultivos. En cada zona, entre las especies vegetales cultivadas y no cultivadas, es importante que se efectúen observaciones de que plantas las babosas se alimentan mucho y poco, y de que plantas las babosas no consumen nada en lo absoluto. Estas últimas podrían ser utilizadas como plantas repelentes, después de haber demostrado este efecto en parcelas pequeñas. 7.4. CONTROL BIOLÓGICO Predatores de Babosas.-Muchos predatores se alimentan de babosas, y es importante proveer las condiciones favorables para el incremento de sus poblaciones. Entre las principales consideraciones al respecto, se encuentra la no aplicación de insecticidas de amplio espectro en el jardín, la huerta o el cultivo, y más aún tratar de buscar otras alternativas no químicas para el control de insectos o ácaros plaga, o en última instancia aplicar plaguicidas más selectivos y/o aplicaciones focales. Existen muchos predatores de babosas que tienen que ser observados en cada localidad. De manera general tenemos algunos ejemplos: • Carabidae – Son coleópteros que generalmente viven debajo de tablas, piedras, donde se ocultan durante el día. • Ranas – Prefieren los lugares húmedos y un cuarto de su dieta puede comprender babosas. • Aves – Varias especies de aves, incluyendo a los patos, se alimentan de babosas. En muchos países estas aves de corral son liberadas a los campos de cultivo para que se alimente de babosas y caracoles. • Moscas – Especies de Diptera de la familia Sciomyzidae son importantes predatores al estado larval de caracoles y babosas, tanto acuáticas como terrestres. 8. BIBLIOGRAFIA CONSULTADA •

CAB International. 2003. Crop Protection Compendium. 2002 Edition. Wallingford, UK. Computer database.

4.2 Caracoles ANTECEDENTES

Los caracoles constituyen una de las plagas mas conocidas a nivel mundial y desde hace muchos años representan un problema importante para la agricultura en amplias zonas de Francia, Inglaterra, Estados Unidos y China. En los últimos cuatro años comenzaron a detectarse en varios países daños crecientes en los cultivos atribuibles a estos moluscos.

DESCRIPCIÓN Los Caracoles tienen concha y las Babosas el cuerpo desnudo. Se alimentan sobre todo por la noche o en épocas de lluvia, devorando hojas. Su presencia se nota por el rastro plateado que dejan al desplazarse. A veces, una plaga de caracoles causa grandes daños.

CLASIFICACIÓN DE LA CLASE GASTRÓPODA La posición taxonómica de esta Clase según CABI (2003) es la siguiente: Dominio: Eukaryota Reino: Metazoa Phylum: Mollusca Clase: Gastropoda Los caracoles son moluscos de la clase Gastrópoda, es decir, son animales invertebrados de cuerpo blando no segmentado. El término Gastrópoda se origina de los vocablos gastro (estómago) y podos (pies), los mismos que hacen referencia a la forma de desplazamiento de estos animales que literalmente arrastran su “estomago”. Los gastrópodos son excelentes representantes de la biodiversidad con cerca de 35,000 especies vivientes descritas y 15,000 especies fósiles. Estos animales son encontrados en todo el mundo, habitando el mar, cuerpos de agua dulce y en tierra, desde los desiertos más secos, frías montañas y regiones templadas hasta los trópicos y sub-trópicos, pero llegan a ser plagas principalmente en los lugares con climas húmedos y calurosos. BIOLOGÍA Son Hermafroditas: todos los individuos que observamos son machos y hembras al mismo tiempo; consecuentemente todos tienen la capacidad de reproducirse y poner huevos en un número que oscila entre los 100 y los 500 según las especies. En este sentido, podemos decir que existen condiciones de tipo climático (alta humedad del aire, alto contenido de humedad en el suelo y temperaturas medias entre los 15 -18 grados centígrados) que favorecen a la plaga. También existen condiciones de suelo (suelos con medios a altos contenidos de materia orgánica, buena estructura y alta capacidad de retención de humedad) que permiten la proliferación de estos moluscos. Por último, los sistemas de siembra como las labranzas reducidas y especialmente la siembra directa aseguran un mayor contenido de humedad y una adecuada cobertura del suelo; lo cual mejora las condiciones para la aparición de la plaga. CONTROL Control Químico Se combaten fácilmente con cebos o gránulos con las materias activas Metaldehido o con Metiocarb (para Caracoles pueden controlarse con ambos) que se reparte por el suelo y próximo a la planta en pequeños montones.

Por lo tanto, el empleo de Cebos Tóxicos específicos a base de Metaldheido son la herramienta con la que contamos para controlarlas. BIBLIOGRAFIA CONSULTADA • •

CAB International. 2003. Crop Protection Compendium. 2002 Edition. Wallingford, UK. Computer database. Cebo microgranulado para controlar caracoles y babosas en jardines y cultivos de huerta.2003.Infojardín. Fichas de caracoles y babosas. www.infojardin.com/rosales/Plagas_y_enfermedades/

ESPECIES DE AFIDOS REPORTADOS COMO VECTORES DE ENFERMEDADES EN PAPAYA. ESPECIE

ENFERMEDAD

Acyrthosiphon pisum (Harris) Aphis coreopsidis (Thomas) Aphis craccivora Koch Aphis fabae Scopoli Aphis gossypii Glover Aphis illinoisensis Shimer Aphis nerii Fonscolombe Aphis rumicis Linnaeus Aphis spiraecola Patch Aphis umbrella (Borner) Carolinaia cyperi Ainslie Lipaphis erysimi (Kaltenbach)

Virus no persistentes (ex. PRSV-p)1. PRSV-p Virus no persistentes (ex. PRSV-p)1. Virus no persistentes, PRSV-p Papaya Ringspot Virus, PRSV-p Virus no persistentes (ex. PRSV)1 Virus no persistentes (ex. PRSV)1 Virus no persistentes (ex. PRSV)1 Papaya Ringspot Virus, PRSV-p Virus no persistentes (ex. PRSV)1 Virus no persistentes (ex. PRSV)1 Papaya Ringspot Virus, PRSV-p

1. Estudios conducidos en condiciones de laboratorio, no confirmados en condiciones de campo.

ESPECIES DE AFIDOS REPORTADOS COMO VECTORES DE ENFERMEDADES EN PAPAYA. ESPECIE

ENFERMEDAD

Macrosuphum euphorbiae (Thomas) Neotoxoptera formosana (Takahashi) Myzus persicae (Sulzer) Pentalonia nigronervosa Coquerel Rhodobium porosum (Sanderson) Rhopalosiphum maidis (Fitch) Sinomegoura citricola (Van Der Goot) Toxoptera aurantii (Fonscolombe) Toxoptera citricidus (Kirkaldy) Uroleucon ambrosiae (Thomas) Uroleucon sonchi (Linnaeus)

Papaya Ringspot Virus, PRSV-p Virus no persistentes (ex. PRSV)1 Papaya Ringspot Virus, PRSV-p Papaya Ringspot Virus, PRSV-p. Virus no persistentes (ex. PRSV-p)1. Papaya Ringspot Virus, PRSV-p. Papaya Ringspot Virus, PRSV-p. Virus no persistentes (ex. PRSV-p)1. Papaya Ringspot Virus, PRSV-p. Virus no persistentes (ex. PRSV-p)1. Virus no persistentes (ex.PRSV-p)1.

1. Estudios conducidos en condiciones de laboratorio, no confirmados en condiciones de campo.

Familias y Especies de Artropodos Relacionadas Como Vectores de Enfermedades en Papaya. FAMILIA Y ESPECIE

Epitrix hirtipennis (Melsheimmer). Empoasca dilitard. Empoasca papayae Oman. Orosius argentatus (Evans). Solanasca stevensi (Young, 1953). Tetranychus sp. Franklinella fusca (Hinds). Franklinella occidentalis (Pergrande). Franklinella schultzei (Trybom). Franklinella tenuicomis (Uzel). Scirtothrips dorsalis (Hood). Thrips moultoni. Thrips palmi Thrips temporatus (syn. Setosus) Bailey. Thrips tabaci (Lindenman).

ENFERMEDAD Necrosis Apical del Papayo (Necrosis terminal y Muerte), Tabaco Ringsspot Virus, TRSV. "Bunchy Top" (Fitoplasma). Necrosis Apical del Papayo PANV,; "Bunchy Top" (Fitoplasma). Virus Amarillamiento Letal, PYC (Fitoplasma), (Fitoplasma). "Bunchy Top" (Fitoplasma)". Necrosis Apical del Papayo (Necrosis terminal y Muerte). Tomato Virus Virus Virus Virus Virus Virus

del del del del del del

Marchitamiento Marchitamiento Marchitamiento Marchitamiento Marchitamiento Marchitamiento

del del del del del del

Tomate. Tomate. Tomate. Tomate. Tomate. Tomate.

TSWV. TSWV. TSWV. TSWV. TSWV. TSWV.

Virus del Marchitamiento del Tomate. TSWV. Necrosis Apical del Papayo (Necrosis terminal y Muerte), Virus Anillado Tabaco, TRSV