Trichuris Trichiura

1. Características del género Los miembros del género Trichuris son nematodos parásitos del intestino de los mamíferos. Antiguamente a este género se le denominó con frecuencia Trichocephalus El género Trichuris también llamados gusanos látigo debe ese nombre a la forma del gusano, que parece un látigo con un más ancho "mango" en el final posterior. El Gro. Trichuris incluye a varias especies que infectan el intestino grueso de sus huéspedes. Especies notables incluyen: • • • •

Trichuris trichiura (a veces Trichocephalus trichiuris) - causa tricuriasis Trichuris vulpis (g. del perro) Trichuris campanula (g. del gato) Trichuris suis (g. del cerdo)

2.

Morfología

Además de la membrana vitelina, poseen una cubierta triple, una externa amarillenta, una trasparente interna y la más externa impregnada de bilis. El macho mide 30 a 45 mm de longitud, tiene el extremo caudal enrrollado hasta 360º o más, y sus órganos genitales están formados por un testículo largo y saculado, un vaso deferente y un conducto eyeculador que se vacían en la cloaca. Una espícula lanceolada sobresale a través de una vaina retráctil peneada de extremo bulboso cubierta de muchas espinas pequeñas y curvas y la hembra mide de 35 a 50 mm y presenta un extremo posterior, romo y redondeado. Sus órganos genitales están formados por un solo ovario, un oviducto y una bolsa uterina. El número de huevos producidos diariamente por una hembra se ha calcula de 3000 a 10000. Los huevos miden de 50 a 54 por 23 micras, tiene aspecto de limón con dos prominencias polares, translúcidas semejantes a tapones. Presentan una cubierta amarillenta externa y transparente interna. Los huevos fertilizados no presentan segmentación en la ovoposición. Los huevecillos tienen forma característica de barril, bolillo o aspecto de limón.

De manera esquemática podriamos reducir lo anteriormente dicho en: •

forma: gusano alargado, tienen forma de látigo.

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tamaño: de 3 a 5 cm de largo

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extremidad anterior: delgada ocupa 3/5 del parasito.

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esófago: la porción anterior es muscular con una cuticula en la parte superior, en la parte posterior se encuentra la glandula basilar rodeado del esticosoma, conformado de esticocitos con funciones secretoras.

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dimorfismo sexual: o hembra: extremo posterior recto.Los huevos que pone tienen forma de limón. o macho: extremo posterior en curvatura pronunciada con una espicula copulatriz.

órganos internos más importantes: o hembra: la vulva se encuentra en la intersección del extremo anterior con el posterior, vagina,utero. o macho: espicula copulatriz, testículos, vasos eferentes, glandulas seminales 3. Especies más importantes • Trichuris Trichiura • Trichuris vulpis, El trichuris vulpis, también denominado gusano látigo por su forma, es un nemátodo que parásita cánidos, especialmente perros, lobos y zorros y, ocasionalmente, al hombre ( por lo que es importante considerar a la trichuriasis como zoonosis). •

Los adultos viven en colon y ciego, son verdaderos gusanos chupadores de sangre, por esta razón se denominan hematófagos. El contagio en todas las especies se produce a través del contacto con las heces infectadas e ingestión de huevos. La sintomatología

mas frecuente es dolor abdominal, cólicos y evacuaciones con diarreas pastosas con moco y sangre fresca de color ocre-amarillenta, los vómitos pueden o no estar presentes. •

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Para su diagnóstico se deben realizar estudios coproparasitológicos. Trichuris campanula, se encuentra en el ciego y en el colon de los gatos. El macho mide 21,5 mm. De largo, posee dos papilas en el extremo posterior, la espícula es larga y delgada y la bolsa de la espícula se ensancha en su terminación en forma de campana cuando está extendida y cubierta con espinas en forma de cono. Las hembras miden de 17 a 31,5 mm. De largo. Eñ esófago ocupa las cuatro quintas partes de la longitud del cuerpo. La vulva está situada a corta distancia del extremo posterior. Hay una banda de espinas en la superficie ventral de ambos sexos. Los huevos miden de 72 a 81 por 21 a 36 micras. Trichuris leporis, se encuentra en el ciego e intestino grueso de conejos y otros roedores. El macho mide de 19 a 22 mm, la bolsa de la espícula tiene un abultamiento posterior, está cubierta por pequeñas espinas, excepto cerca de su extremo distal. La hembra mide de 17,4 a 20,9 mm de largo y los huevos de 65 a 60 por 29 micras. Otras especies del género muy semejantes a las anteriores son: Trichuris Globulosa, que se encuentra en el ciego de bovinos, ovinos, caprinos y otros rumiantes domésticos y silvestres. Trichuris Suis, se encuentra en el colon y el ciego de los cerdos.

4. Descripción de los ciclos biológicos La infección se adquiere por la ingestión de alimentos o agua contaminados con los huevos embrionados. El período de incubación es de unoa tres meses, y la infección puede persistir hasta durante 6 años, si bien un año es la regla. Una vez ingeridos, los huevos infecciosos se desarrollan en el intestino delgado. Algunos estudios indican que las larvas liberadas ingresan en las criptas intestinales cercanas y en las glándulas y el extroma, desde donde reingresan en la luz del intestino delgado después de unos 10 días y

migran hacia el intestino grueso. Aquí los extremos anteriores de los gusanos adultos en desarrollo se adhieren con fuerza a la mucosa del intestino grueso, tipicamente en el ciego y el apéndice. El grueso extremo posterior de cada gusano cuelga libremente en la luz del intestino en el momento de la madurez sexual se produce la copulación y comienza la producción diaria de 2.000 a 6.000 huevos por parte de las hembras. Debe decirse que otros estudios indican que las larvas liberadas migran directamente hacia el ciego, maduran de forma directa en él, sin una fase tisular en el intestino delgado. Los huevos liberados por las hembras aparecen en las heces durante el estadío no desarrollado (no infeccioso). En condiciones ambientales favorables, que incluyen una temperatura cálida, sombra, humedad y suelos con humus arenosos, los huevos se desarrollan y se vuelven infecciosos en 3 a 6 semanas. Los huevos de este nematodo carecen de la gran resistencia de los huevos del ascaris y se considera que su supervivencia es relativamente breve, es decir, de algunas semanas. 5. Patología producida: Los gusanos lesionan los tejidos en los cuales penetran y pueden transportar bacterias y otros agentes infecciosos hacia estos sitios. Si las cabezas de los gusanos penetran en los capilares sanguíneos se producen hemorragias petequiales. El grado de la lesión se correalaciona con el número de gusanos involucrados. En las infecciones leves se produce relativamente poco daño, pero en las infecciones severas la mucosa se vuelve hiperémica, se erosiona superficialmente y puede inflamares de forma extensa. La irritación extrema en la pared de la parte inferior del colon y en el recto puede provocar el prolapso parcial o total del recto. De acuerdo con el grado de infección y reacción del individuo los signos y los síntomas varían de leves (malestar en el cuadrante inferior derecho, flatulencia, pérdida del apetito y del peso) a severos (náuseas, vómitos, diarrea mucosa o disentería o anemia). Las afecciones más que produce el Trichuris Trichiura es nombrada como tricuriasis, tricuriasis o tricocefalosisicon, que comprende los siguientes rasgos, algunos ya comentados anteriormente: La tricuriasis es una infección común en todo el mundo que afecta principalmente a los niños, quienes la pueden desarrollar a partir de la ingestión de tierra contaminada con huevos de Trichuris trichiura. Cuando los huevos se incuban dentro del cuerpo, el gusano se fija al interior de la pared del intestino grueso. El Trichuris trichiura se encuentra en todo el mundo, particularmente en países con climas cálidos y húmedos y el

principal factor de riesgo de esta infección comprende la ingestión de tierra contaminada con heces. Algunos brotes se han rastreado hasta vegetales contaminados, debido a posible contaminación de la tierra. Al igual que mencionamos anteriormente Los síntomas van de leves a severos y, algunas veces, no se presentan. Una infección grave puede ocasionar diarrea, anemia ferropénica y, en ocasiones, prolapso rectal. Las infecciones ocurren más a menudo en áreas donde el nivel de humedad es elevado, la temperatura es cálida y los suelos tienen mucha capacidad de retener humedad. La contaminación de los patios de las casas y las malas condiciones sanitarias conducen a infecciones importantes. Las infecciones en general coexisten con infecciones por áscaris y, muchas veces, por especies del género Entamoeba y por uncinarias. Sin embargo, la distribución puede ser más desigual que la de los áscaris y se cree que esto se debe a la menor resistencia de los huevos de Trichuris Trichiura. En general la severidad de la infección se correlaciona con la edad, el estado nutricional y la carga de gusanos. Los niños desnutridos son los más severamente infectados. No existe reservorio animal para este gusano. 6. Diagnóstico parasitológico El diagnóstico sobre la base de los síntomas es difícil, pero el diagnóstico parasicológico se lleva a cabo fácilmente por el hallazgo de los huevos característicos en las heces. Estos huevos miden alrededor de 20 a 50 µm. y tienen forma de barril, con un color marrón dorado y prominencias denominadas tapones polares en cada extremo. Puede haber poca cantidad de huevos y es posible

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Examen directo al fresco. a) Colocar dos o tres gotas salina a 0,85% en una lámina de microscopio. b) Tomar con la punta de un palillo una pequeña porción de heces en varios puntos de las heces hasta alcanzar un tamaño final de un grano de arroz. c) Homogeneizar la muestra en la gota de salina con la ayuda del palito, colocarle un cubreobjeto y examinar con objetivo de 10X y/o 40X. La espesura de la muestra no debe impedir el pasaje de luz. d) Diferencie los artefactos en la muestra. Con ayuda de claves e ilustraciones identifique los huevos y larvas de helmintos. e) Reporte sus resultados en la ficha de examen. •

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Coloración rápida. a) a) Proceda como en el ítem anterior sustituyendo la salina por una gota de lugol o prepare la muestra como en el ítem anterior. b) b) Coloque una gota de lugol en uno de los extremos de la laminilla. De esta forma, con la misma muestra permite realizar el directo primero y luego la coloración rápida. Método de concentración por flotación de Willis.

Recomendado especialmente para la investigación de Geo-helmintos. Consiste en preparar el material fecal con Solución saturada de ClNa. Los Huevos de helmintos de peso específico menor que la solución saturada de ClNa tienden a subir y adherirse a una lámina colocada en contacto con la superficie del líquido. Reactivo: Solución saturada de ClNa. Técnica: 1. 1. Tomar 1 gr aproximadamente de materia fecal. 2. 2. Colocar la muestra en un recipiente pequeño de boca ancha o la misma tapa de la caja para recolectar las heces y mezclar con la solución saturada de ClNa con la ayuda de un palillo. 3. 3. Trate de llenar completamente el recipiente con la solución, mezcle. 4. 4. Cúbralo con un porta objeto limpio, de manera que el líquido haga contacto con la lámina. Si es necesario coloque mas solución. 5. 5. Esperar 5-10 minutos. 6. 6. En ese lapso, los huevos de helmintos, cuyo peso específico es menor que el de la solución, flotarán y quedarán adheridos a la cara del porta objeto en contacto con la mezcla. 7. 7. Retirar el porta objeto e invertirlo rápidamente para evitar pérdida de material. 8. 8. Examinar al microscopio inmediatamente. 9. 9. Reporte sus resultados en la ficha. Discútalos con sus compañeros, ventajas y desventajas del método. Este método es de alta sensibilidad en el diagnóstico de huevos livianos de helmintos: A. duodenale, N. americanus, A. lumbricoides, H. nana. No indicado en la búsqueda de huevos pesados ni de larvas. •

Método de concentración-Flotación de Faust (especialmente utilizado en el tricocefalo). Este método se utiliza solución de Zn, cuya densidad específica es de 1.180 (33%), que conforma un medio de densidad más alta que la de los huevos: Necator 1.055, Tricocéfalo 1.150, Ascaris fértil 1.110 y facilita que los huevos livianos de estos helmintos, con menor peso específico que la solución, se concentren y floten. La concentración adecuada aconsejada es la que usa como reactivo una solución acuosa de sulfato Zn al 33% con una densidad al 1.180. El agua utilizada diluye y lava la materia fecal. El filtrado con gasa doblada y evita que los detritos gruesos traspasen las

paredes, la centrifugación enriquece en delgada película la superficie del líquido centrifugado con los huevos livianos de algunos helmintos. Técnica: 1) 1) Mezclar bien una porción de materia fecal para preparar una superficie en 10 partes de agua destilada. 2) 2) Filtrar la suspensión a través de una gasa doblada en cuatro, sobre un tubo de centrífuga, ayudándose con un embudo pequeño. 3) 3) Centrifugar el filtrado a 2500 rpm por 1 min. 4) 4) Decantar el líquido sobrenadante y completar con agua hasta igualar la medida anterior, centrifugar nuevamente . Resuspender el sedimento. 5) 5) Repetir el procedimiento 2 veces hasta que el líquido sobrenadante este listo. 6) 6) Decantar nuevamente el líquido sobrenadante reemplazándolo por igual cantidad de solución de sulfato de Zn al 33%. Mezclar bien la solución con el sedimento. Centrifugar durante 1 minuto a 1500 rpm. 7) 7) Tomar 3-4 gotas de las partículas que flotan en la superficie del líquido. Colocarlos en un porta-objeto y mezclarla con 1-2 gotas de lugol, colocar cubre-objeto. 8) 8) Examinar al microscopio y reporte sus resultados. Método indicado para el diagnóstico de huevos livianos de helmintos (Necator, tricocéfalos, ascaris, H. nana). •

Metodo de Kato.

Reactivos: Solución de Kato: Glicerina 500 ml H20 destilada 450 ml Verde de malaquita 3% 6 ml Completar hasta 1000 ml con H20 destilada. Material: Papel celofán humedecible Frasco ámbar Procedimiento: Se corta el papel celofán en pequeños rectángulos de 25X40mm. En un frasco ámbar se coloca la solución de Kato, se introducen los cortes de celofán. Se depositan por un tiempo mínimo de 24 horas antes de ser usados. Técnica: 1) 1) Colocar en porta-objeto 60-70 mg de heces (±grano de arroz). 2) 2) Tomar un trozo de papel celofán humedecido en solución de Kato y se escurre en papel absorbente para quitar el exceso. 3) 3) Invertir la preparación sobre la superficie plana y hacerle presión con

el dedo, hasta que la muestra se extienda hasta 20-25 mm que no salga de los bordes del papel. 4) 4) Secar y clarificar a temperatura ambiente 30-45 minutos ó con una lámpara de 50W a una distancia de 20-30 cm por 15 minutos. 5) 5) Examinar y reportar sus resultados. Ventajas del método: a) a) Permite el despistaje de varios parásitos en una misma muestra. b) b) Puede ser aplicado con facilidad en el medio rural. c) c) Es de bajo costo. d) d) Facilidad el contaje de huevos de S. mansoni y de infecciones moderadas de algunos otros helmintos. Desventajas: a) a) Está contraindicado en muestras verdaderamente diarreicas. b) b) No es recomendable en el despistaje de larvas de S. stercoralis, se tornan invisibles debido a la clarificación que hace la glicerina. 2.6 Kato cuantitativo Es una técnica para cuantificar la intensidad parasitaria en 1 gr de heces y se procede semejantemente a la Técnica de Kato. a) a) Se pesa 50 mg de heces. Esto indica que la Técnica se fundamenta en diagnosticar la veinteava parte de ml ( 1gr), por lo tanto, para conocer la carga parasitaria de un gramo de hece de un paciente, bastaría solamente multiplicar la cantidad de huevos logrados en 50 mg por 20.

Grados de infestación de acuerdo con el recuento de huevos: __________________________________________________________________ Grado huevos/gr. De heces # de helmintos. __________________________________________________________________ 1 Infestaciones leves menos de 2600 2 Infestaciones moderadas 2600 a 12559 3 Infestaciones intensas 12600 a 25599 4 Infestaciones muy intensas más de 2600 7. Bibliografía: Páginas web: http://www.cecyt15.ipn.mx/polilibros/parasit/UNIDAD7/trichuris.html http://usuarios.lycos.es/paraelsa/manual04/practica-6.htm- Universidad de Biología Venezuela http://www.wikipedia.es Libros:

Enfermedades infecciosas tropicales Escrito por Richard L. Guerrant, David H. Walker, Peter F. Weller Parasitología y enfermedades parasitarias de animales domésticos Escrito por Héctor Quiroz, Héctor Quiroz Romero Microbiología Zinser Panamericana Escrito por Joklik, Willet, Amos, Willfert