Tecnicas De Deteccion De Mutaciones En Adn

Rev. peru. biol. 12(3): 349- 358 (2005) © Facultad de Ciencias Biológicas UNMSM

Versión Online ISSN 1727-9933 La técnica SSCP para detectar mutaciones puntuales

Uso de la técnica SSCP para detectar mutaciones puntuales del ADN mitocondrial humano Use of the SSCP technique to detect point mutations on human mtDNA Alejandro Estrada-Cuzcano, José Sandoval, María L. Guevara-Fujita y Ricardo Fujita* Presentado: 07/07/2005 Aceptado: 02/02/2006

Resumen En el presente trabajo se evalúa la técnica de SSCP (polimorfismo de conformación de cadena individual de ADN) para detectar mutaciones puntuales, tanto por su sensibilidad en la detección (alrededor 80% en condiciones ideales), como por su implementación fácil y económica. Se utilizaron como controles positivos y negativos, ADN de voluntarios caracterizados previamente para las mutaciones puntuales de 5 RFLPs mitocondriales. Para la optimización de la prueba fueron ensayadas concentraciones variables del tampón TBE (1X y 0,5X) y del glicerol (10%, 5% y 0) en geles de poliacrilamida. Cuatro de los 5 RFLPs fueron detectados en las condiciones utilizadas y pueden ser usados en estudios de rutina sin usar enzimas de restricción. Además, la técnica SSCP permitió determinar mutaciones desconocidas en un segmento de 394 nucleótidos de la región hipervariable (HVI) del ADNmt. Diferencias en correspondencia a los distintos haplotipos fueron detectados e incluso permitió discernir grupos dentro del mismo subtipo. La secuenciación de dos muestras del subtipo B1 con migración diferencial en SSCP, corroboró la existencia de siete nucleótidos distintos. Palabras clave: SSCP, ADNmt (ADN mitocondrial), mutaciones puntuales, SNP (polimorfismo de un solo nucleótido).

Abstract

Keywords: SSCP, mtDNA, point mutation, SNP.

Introducción La comparación del genoma de dos individuos del mismo sexo revelaría millones de mutaciones esparcidas a lo largo de todas las regiones cromosómicas. La mayoría de las mutaciones cambian una sola base de cada 500−1000, frecuentemente en segmentos no codantes y eventualmente en los codantes. Por (*) Instituto de Genética y Biología Molecular, Facultad de Medicina Humana, Universidad de San Martín de Porres, Alameda del Corregidor 1531, La Molina, Lima, Perú. Tel: (511) 365–2300 / 365-2574 anexo 152, fax: (511) – 365–0487. E-mail Ricardo Fujita: [email protected] Rev. peru. biol. 12(3): 349- 358 (2005)

esta razón la mayor parte de éstas no tiene efectos fenotípicos. Sin embargo algunas pueden provocar o estar asociadas a enfermedades. Cuando una mutación puntual está en una frecuencia mayor al 1% en la población, se le conoce como SNP (single nucleotide polymorphism−polimorfismo de un nucleótido). Con el estudio del genoma humano se ha incrementando el conocimiento del número de genes involucrados en diversas enfermedades hereditarias. Actualmente se registran cerca de 5700 diferentes enfermedades con componente genético (OMIM-On-Line Mendelian 349

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We evaluate the use of SSCP (single strand conformational polymorphism), a relatively easy and inexpensive technique for the detection of point mutations with a sensibility around 80% under ideal conditions. To test the technique, we used samples of volunteers whose DNA had been previously characterized for the presence or absence of 5 mitochondrial RFLPs. Optimization of the tests included variations in TBE (1X and 0,5X) and of glycerol concentration (10%, 5% and no glycerol) in polyacrylamide gels. Four out of five RFLPs were detected under the conditions used and could be applied routinely without using restriction enzymes. In addition, the SSCP technique allowed detection of unknown mutations in a 394 bp nucleotide segment of the hypervariable (HVI) region of mtDNA. Differences corresponding to different haplotypes were detected, helping to distinguish groups within the same subtype. Sequencing of two samples of subtype B1 with differential migration on SSCP gels, proved the existence in seven different nucleotides.

Estrada et al.

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Inheritance in Man, 2004). Se han identificado mutaciones que causan o predisponen a enfermedades y su caracterización sirve para el diagnóstico, pronóstico, tratamiento y eventualmente prevención de la enfermedad. Algunos SNPs también son útiles como marcadores genéticos porque constituyen la mutación que predispone o porque están físicamente cerca a la mutación causal de la enfermedad. En la búsqueda de mutaciones puntuales, se emplean métodos como el secuenciamiento directo, RFLPs (Southern, 1975), clivaje químico, CCM (Cotton et al., 1988), clivaje por RNAsa (Goldrick et al., 1996) u oligonucleótidos alelo específicos para hibridación (ASO) (Nollau & Wagener, 1997), entre otros. Estos métodos presentan diferentes rangos de sensibilidad, además de requerir reactivos y equipos sofisticados, que aumentan su complejidad y costo operativo. Frente a ellos, el método de SSCP es fácil y económico, pues usa segmentos amplificados por PCR visualizados en geles de acrilamida con adyuvantes (Orita et al., 1989). El SSCP es un método capaz de identificar la variación de un sólo nucleótido en un segmento de ADN, típicamente entre 150 a 200 nucleótidos de largo. En condiciones ideales el rango de sensibilidad del SSCP varía entre 80− 90% para detectar mutaciones en fragmentos menores de 200 pares de bases (Sheffield et al., 1993). El método del SSCP se basa en que bajo condiciones no desnaturalizantes una hebra individual de ADN adopta una conformación espacial que es específica de la composición de su secuencia nucleotídica (Fig. 1). Esta conformación sería dependiente de la hibridación entre distintas regiones de un segmento de ADN replegado sobre sí mismo. La configuración diferente es provocada por el cambio de una sola base, entonces podría ser detectada en algunas condiciones de migración electroforética en una matriz de poliacrilamida (Orita et al., 1989, Humphries et al., 1997). La técnica es simple, versátil y económica, pero exige la optimización de parámetros en la composición del gel para cada fragmento a evaluar. 350

Los polimorfismos del ADN mitocondrial (ADNmt) son utilizados usualmente para el estudio de la diversidad del genoma humano. Esto permite la comparación entre individuos de diferentes poblaciones e incluso entre individuos de distintas épocas. El método más usado para determinar subtipos de ADNmt en nativos americanos (amerindios) consiste en la detección de 8 sitios polimórficos en diferentes regiones del ADNmt. Siete son SNPs detectados por el método llamado RFLP (polimorfismos de longitud de fragmentos de restricción) y uno es la inserción/deleción de un segmento de 9 pares de bases. El RFLP es un SNP que coincide en el sitio de reconocimiento de una enzima de restricción. Su presencia o ausencia determina que la enzima corte o no el segmento de ADN. Evidentemente solo una pequeña porción de SNPs serán detectadas por la técnica RFLPs. A partir de la combinación de los sitios polimórficos en cada individuo se confeccionan haplotipos que definirán tipos y subtipos de ADNmt. Los ADNmt amerindios han sido definidos en 4 tipos (haplogrupos) más frecuentes A, B, C y D (Schurr Muestra 1

Muestra 2

GAATCGATCCTAGGCA CTTAGCTAGGATCCGT

GAATCGATACTAGGCA CTTAGCTATGATCCGT

Hebra individual

Hebra doble

Figura 1. Representación esquemática del fundamento de la técnica de SSCP durante la electroforesis en un gel no desnaturalizante. La movilidad electroforética de cada fragmento depende del auto plegamiento de acuerdo a la formación de estructuras secundarias. Rev. peru. biol. 12(3): 349- 358 (2005)

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(a)

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Figura 2. Cinco RFLPs del ADNmt humano usados para las pruebas de SSCP. Se indica la posición del RFLP (P) y la secuencia nucleotídica que reconoce la enzima de restricción, si ésta secuencia es diferente la enzima no corta al ADN en esa posición. Panel a: fragmento de 121 pares de bases (bp) susceptible a la digestión con la enzima de restricción HaeIII en la posición +626 (sitio de restricción constitutivo) y +663 (sitio de restricción polimórfico), que generan fragmentos de 66, 38 y 17 bp en muestra 3; en muestras 1 y 2 solo se generan dos fragmento de 104 y 17 bp debido a un cambio del sitio +663. Panel b: fragmento de 183 bp susceptible a la digestión con AluI en las posiciones +5042 (constitutivo) y +5176 (polimórfico), muestras 1, 3 y 5 presentan fragmentos de 134 y 34 bp denotando el sitio AluI, muestras 2, 4 y 6

generan fragmentos de 168 bp por ausencia del sitio AluI en +5176. Panel c: El fragmento de ADN de 181 bp presenta sitio de corte para HincII en la posición −13259 (polimórfico)que genera fragmentos de 155 y 26 bp en las muestras 1 y 2, la muestra 3 no presenta este sitio de restricción por lo tanto el fragmento de 181 bp permanece intacto. Panel d: fragmento de 335 bp (muestra 1) susceptible a digestión con DdeI, presenta sitios de restricción en las posiciones +10356 (constitutivo) y +10394 (polimórfico) que generan fragmentos de 175 y 38 bp en la muestras 2, 8 y 10; en las muestras 1, 3, 4, 5, 6, 9, y 11 varía la secuencia CTGAG por CTGAA lo que elimina el sitio de restricción generando fragmentos de 213 y 122 bp. Panel e: fragmento de 261 bp (muestra 1) que presenta sitios de restricción para HaeIII en el las posiciones +16517 (polimórfico) y +16456 (constitutivo), esto genera fragmentos de 171, 61 y 29 bp en las muestras 2, 3 y 6. Las muestras 4 y 5 presentan una variación en la posición +16517 que altera el sitio de restricción generando fragmentos de 90 y 171 bp. M es el marcador de tamaño, P es la ubicación del sitio polimórfico, las líneas punteadas (••••••) representan fragmentos de ADN resultado de cortes de restricción en sitios constitutivos, por lo que siempre están presentes en las digestiones de ambos alelos.

Estrada et al.

Amplificación por Reacción en cadena de la polimerasa (PCR)

et al., 1990). La adición de un sitio polimórfico diseca los haplogrupos en subtipos A1, A2, B1, B2, C1, C2 y D1 y D2 (Bailliet et al., 1994).

Para las pruebas de estandarización de la técnica SSCP, usamos como controles ambos alelos de 5 RFLPs del ADNmt (ver Tabla 1) que fueron analizados siguiendo las indicaciones de Sandoval et al. (2004) (Figura 2). Subsecuentemente evaluamos un segmento de 394 pares de bases cubriendo la región hipervariable HVI (ver Tabla 1), sobre la que no teníamos información previa de posibles diferencias entre las muestras. La amplificación por PCR se realizó en un volumen total de 20 microlitros (µl), 0,2 micromolar (µM) de cada par de oligonucleótidos cebadores (primers) correspondientes (Operon Technologies Inc, California), 2,5 µM de cada uno de los deoxinucleótidos trifosfatados (dNTP) (Applied Biosystems™,California); 50 mM KCl, 10 mM Tris-HCl, pH 8,3; 2,5 mM MgCl2, 1 unidad de Taq polimerasa (Applied Biosystems™, California) y 40 nanogramos (ng) de ADN.

En el ADNmt existe la región D-loop, que tiene 2 segmentos muy variables denominadas HVI (región hipervariable I) y HVII (región hipervariable II). Debido a que contienen secuencias no codantes y no tienen el sistema de reparación tan eficiente como el nuclear, acumulan rápidamente mutaciones en pocas generaciones. Por esta razón HVI y HVII están siendo usados paulatinamente para obtener un análisis más refinado de SNPs del ADNmt. En este trabajo presentamos los resultados de la implementación del método SSCP utilizando como controles, SNPs de 5 RFLPs del ADNmt. Subsecuentemente la metodología nos permitió detectar mutaciones dentro de la región D-loop. Esta región fue escogida por su conocida variabilidad y que permite refinar el análisis de los diferentes linajes mitocondriales en las poblaciones que estamos estudiando.

Los segmentos fueron amplificados en un termociclador AmplitronII (Thermolyne™) con un programa de amplificación de 35 ciclos: desnaturalización a 94 °C por 30 segundos; hibridación por 30 segundos a una temperatura específica acorde al par de cebadores utilizados (Tabla 1) y replicación a 72 °C por 45 segundos.

Material y métodos

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Material humano

Las muestras de ADN fueron obtenidas de sangre periférica de 16 isleños voluntarios del Lago Titicaca (Uros−Torani, Taquile, Amantaní, Anapia) y 8 pobladores de la ciudad de Lima, luego del consentimiento pertinente (Sandoval et al., 2002).

Tabla 1. Características principales de fragmentos de mtDNA polimórficos empleados como controles positivos para estandarizar la técnica de SSCP. Éstas incluyen tamaño del fragmento amplificado, la posición de la mutación, la región a la que pertenecen, enzima de restricción que determina el RFLP, temperatura de apareamiento para el PCR y porcentaje de guanina/citocina del fragmento amplificado (%G+C). Cebadores

Longitud (pares de base)

L635/H708

L13257/H13393

Región 12SrRNA ND5

Posición del SNP

Enzima de RFLP

T° de hibridación

% G+C

121

+663

Hae III

62 °C

42,98

181

-13259

Hinc II

58 °C

52,54

ND2

L5054/H5189

183

+5176

Alu I

62 °C

38,80

D-loop

16287-16306/ 16547-16527

261

+16517

Hae III

58 °C

50

ND3

10235-10254/ 10569-10550

335

+10394 +10397

Dde I Alu I

50 °C

35,52

L16055/H16410

394

−

−

58 °C

46,33

D-loop

352

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La técnica SSCP para detectar mutaciones puntuales

Condiciones de los geles de poliacrilamida

Cinco µl de producto PCR se mezclaron con igual cantidad de tampón de carga (95% de formamida, 89 mM Tris base, 89 mM ácido bórico y 2 mM EDTA (ethylene diamine tetra acetic acid), 0,1% de Azul de Bromofenol, 0,1% de Cianol-xileno); luego fueron desnaturalizados a 95 °C por 5 min. y se mantuvieron en hielo durante 10 min. Se cargaron 6 µl de la mezcla en los cuatro diferentes geles tipo secuenciamiento (20 cm x 40 cm x 0,4 mm). En todos los casos, los ensayos electroforéticos se realizaron a 280 voltios, durante 16 horas a temperatura ambiente. Para la visualización de los segmentos amplificados se tiñó el gel con la técnica de nitrato de plata (Creste et al., 2001). Los geles se prepararon con poliacrilamida al 8% (49:1, acrilamida : bisacrilamida) y con cuatro diferentes proporciones de glicerol y de tampón TBE (89 mM Tris base, 89 mM ácido bórico y 2 mM EDTA) obteniéndose cuatro tipos de geles: I) II) III) IV)

petri con ampicilina. Colonias selectas fueron cultivadas en 5 mL de medio Luria-Bertani, se extrajo el ADN plasmídico con métodos convencionales (Sambrook et al., 1989) y se procedió a secuenciarlo utilizando el kit de secuenciamiento Silver Sequence DNA Sequencing System (Promega, WI, USA), pero modificado con cebadores marcados por kinasa con 1 microcurie (µCi) de fósforo 33 γ-dATP (Amershan, Il, USA). Una vez separadas las muestras por electroforesis y secado el gel, éste se expuso a un film Bio-max (Kodak) por 12 horas. Análisis de las secuencias nucleotídicas

Las lecturas de los geles de secuencia se realizaron entre 2 personas y al menos 2 veces para evitar ambigüedades o errores de lectura. Los alineamientos de ADN se realizaron utilizando el programa Bioedit (www.mbio.ncsu.edu/BioEdit/bioedit.html). Resultados Determinación de condiciones para detectar mutaciones por SSCP en algunos RFLPs del ADNmt

10% de glicerol y TBE 1 X. 10% de glicerol y TBE 0,5 X. 5% de glicerol, TBE 0,5 X. Sin glicerol, TBE 0,5 X.

Secuenciamiento

Tabla 2. Aqui los signos >>, > y N indican diferencias en la migración electroforética: >> señala diferencias en las bandas visibles, > señala diferencias en algunas bandas e identidad en otras. N denota no diferencias. Tamaño ADN 121 bp 181 bp 183 bp 261 bp 335 bp 394 bp

10% glicerol, TBE 1X

10% glicerol, TBE 0,5X

5% glicerol, TBE 0,5X

Sin glicerol, TBE 0,5X

>> >> N >> N >>

> > N >> > >

> N N > > N

N N N > > N

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Las muestras amplificadas de ADN se extrajeron cortando el fragmento de un gel de agarosa y filtrándolo a través de un tubo purificador Coastar. El segmento purificado se insertó en un vector plásmido pCR2.1 (Invitrogen Life Technologies, CA), luego se realizó la transformación bacteriana en E. coli y los clones fueron seleccionados de placas

Se evaluaron varias condiciones experimentales variando la composición de los geles de SSCP con controles positivos y negativos para 5 polimorfismos conocidos (RFLPs del ADNmt). Las variables fueron la concentración del tampón de electroforesis, TBE y la concentración de glicerol (Tabla 2). Cuatro de los 5 fragmentos analizados mostraron diferencias en la migración electroforética, aunque sea en una de las condiciones probadas. Solo el fragmento de 183 pares de bases (AluI,

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Estrada et al.

Figura 3. Comparación de condiciones para SSCP en polimorfismos de RFLPs mitocondriales. Paneles a y b, presentan el segmento que contiene el RFLP Alu I de 183 bp (posición 5176) en 2 personas previamente caracterizadas como positivas para el sitio polimórfico Alu (+) y en 2 personas que carecen del sitio Alu (-). Panel a: gel de 8% acrilamida; 10% glicerol y 1X TBE; panel b: gel de 8% de acrilamida; sin glicerol y 0,5 X TBE. Las flechas en ambos paneles muestran bandas que son iguales en ambas condiciones; corresponde a «N» (No diferencias) en tabla 2. Paneles c y d representan el segmento que contiene el RFLP DdeI/AluI de 335 bp (posición 10394/10397). Las flechas horizontales en panel c indican bandas idénticas en 4 personas previamente caracterizadas; 2 como positivas para el sitio polimórfico DdeI/AluI (+) y en 2 personas que carecen del sitio DdeI/AluI (−), las condiciones fueron 10% glicerol y 1X TBE. Las flechas inclinadas en panel d indican bandas diferentes dependiendo de la presencia del sitio AluI; las condiciones de migración fueron 8% acrilamida sin glicerol y 0,5 X TBE y corresponde a «>» (algunas bandas diferentes y otras idénticas) en tabla 2. Paneles e y f, representan al segmento que contiene el RFLP HaeIII de 121 bp (posición 663). Las flechas horizontales en panel e indican bandas idénticas en 4 personas previamente caracterizadas; 2 como positivas para el sitio polimórfico HaeIII (+) y en 2 personas que carecen del sitio HaeIII; las condiciones fueron no glicerol y 0,5 X TBE. Las flechas inclinadas en panel f indican bandas diferentes dependiendo de la presencia del sitio HaeIII, las condiciones de migración fueron 8% acrilamida, 10% glicerol y 1 X TBE y corresponden a «>>» (todas las bandas son diferentes) en tabla 2.

354

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La técnica SSCP para detectar mutaciones puntuales

(a)

(b) Figura 4. Comparación de electroforesis de un segmento de la región hipervariable I del mtDNA (D-loop) de 24 individuos nativos. En el panel a se muestra la electroforesis en condiciones denaturantes con 8% de acrilamida y 50% úrea, utilizada para determinar diferencias en tamaños. No se ven diferencias de tamaño entre las 24 muestras. En panel b se muestra electroforesis para condiciones de SSCP en 8% de acrilamida 10% de glicerol y TBE 1X. Nótese la diferencia entre los segmentos que corresponden a los diferentes haplotipos amerindios. Esto indica que a pesar de la igualdad en longitud hay diferencias en la secuencia que son detectadas por la migración en el gel de SSCP.

distintos haplogrupos mitocondriales. La mayoría de muestras del mismo haplogrupo tenían migración similar; pero algunas presentaban diferencias. Por ejemplo, la muestra A0008 de un poblador de Lima, presentó una migración diferente a las demás muestras de su mismo haplogrupo B (subtipo B1). Esta diferencia fue corroborada por la secuenciación directa del segmento en A0008 y la muestra T6 (de la isla Taquile) con migración similar al resto de individuos de haplotipo B subtipo B1 (Fig. 4).

Diferenciación de segmentos polimórficos de la región hipervariable (HVI) del D-loop mitocondrial por SSCP

Se obtuvo la secuencia de estas dos muestras (Fig. 5), encontrándose siete diferencias en su composición nucleotídica (Tabla 3), cinco fueron transiciones, una fue transversión y una sola inserción no detectada por gel desnaturalizante. Posteriormente se utilizó el software Bioedit, se comparó las secuencias T6 y A0008 con secuencias de referencia estándar humano (Anderson et al., 1981), y con las de grupos Yanomami (Easton et al., 1996), Brasil (Alves-Silva et al., 2000) y Arequipa y Tayacaja (Fuselli et al., 2003), que pertenecen al haplogrupo B subtipo B1. Al compararlas, pudimos observar que las varia-

Amplificamos un segmento diseñado para 394 bases de la región hipervariable I (HVI) en el ADN de 24 muestras pertenecientes a individuos previamente caracterizados con diferentes haplotipos mitocondriales (A, B, C, D). Un análisis de longitud de segmentos en condiciones desnaturalizantes sugiere tamaño uniforme en las muestras (Fig. 4a). La migración de las mismas en condiciones de SSCP 10% glicerol y 1X TBE mostraron diferencias notables entre los individuos pertenecientes a Rev. peru. biol. 12(3): 349- 358 (2005)

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+5176) no mostró diferencias en ninguna de las condiciones (Fig. 3a y b). Para el segmento de 335 pares de bases se obtuvo mejor diferenciación en condiciones de baja concentración de TBE (0,5X) y sin glicerol (Fig. 3c y d). Sin embargo para los otros 3 segmentos restantes, las mejores condiciones de detección estaban asociadas a la mayor concentración de glicerol (10%) y a una concentración de 1X del tampón TBE (Tabla 2), ver como ejemplo la figura 3e y f.

Estrada et al.

Figura 5. Secuenciación de las muestras T6 y A0008 correspondientes al ADNmt de la región del D-loop que presentaron migración diferencial en el SSCP mostrado en la figura 2. Se aprecia la similitud de las secuencias; pero también se observa variaciones nucleotídicas en las posiciones 16124, 16354 y 16357 bp.

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ciones T→C en las posiciones 16189 y 16217 eran comunes en estas muestras (Tabla 3). No apreciamos estas variaciones al compararlas con las secuencias de diferentes haplotipos, lo cual nos indica que estas son exclusivas del subtipo B1. La secuencia A0008 muestra la inserción de una citosina en la posición 16194, la cual no es frecuente en secuencias de subtipo B1.

Discusión La mejor técnica para detectar las mutaciones desconocidas es la secuenciación directa, pero es laboriosa y costosa para ser usada rutinariamente. Frente a esta, la técnica SSCP es comparativamente económica, rápida y fácil, habiéndose empezado a usar en muchos laboratorios de investigación en el

Tabla 3. Resultados del alineamiento de la secuencia reportada por Anderson (1981) con la secuencias del HV-I de A0008 y T6, además de los grupos: Yanomami (Yan 61 y Yan 96), Arequipa y Tayacaja (And 20, And 21 y And 32) y Brasil (Br 17, Br 26 y Br 30), todos de haplotipo B. Note las posiciones 16189 y 16217 que indican una variacion T→C en todas las muestras pertenecientes al haplotipo B. Además de la inserción de una citosina en la posición 16194 de la muestra A0008. Posición en HV-I Muestra Anderson T6 (B) A0008 (B) And 20 (B) And 21 (B) And 32 (B) Yan 61 (B) Yan 96 (B) Br 17 (B) Br 26 (B) Br 30 (B)

356

1 6 1 2 4

1 6 1 8 2

1 6 1 8 3

1 6 1 8 8

1 6 1 8 9

1 6 1 9 4

1 6 2 1 7

1 6 2 1 9

1 6 3 5 4

1 6 3 5 7

T . C . . . . . . . .

A . C . . . . . . . .

A C C . . . C C . . .

C T . T . . . . . . T

T C C C C C C C C C C

A . iC . . . . . . . .

T C C C C C C C C C C

G A . . . . . . . . .

C T . . . . . . . . .

T C C . . . . . . .

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La técnica SSCP para detectar mutaciones puntuales

mundo. Uno de los principales inconvenientes de esta técnica, es que aún no se ha podido determinar con precisión los efectos de algunos parámetros que afectan la sensitividad del análisis de SSCP, como por ejemplo: la composición del gel, el tamaño del fragmento de ADN, la composición del tampón, los aditivos como el glicerol, la concentración de ADN y el contenido de guanina/citosina (G+C) del ADN.

Por otro lado se ha señalado que SNPs en fragmentos mayores de 200 nucleótidos son menos sensibles a ser detectados por SSCP (Sheffield et al., 1993), sin embargo, el presente trabajo ha demostrado que en condiciones adecuadas alelos de 261 y 335 pares de bases pueden ser detectados. En el caso del fragmento de 394 pares de bases del HVI del D-loop, no sabemos si se podría detectar una mutación de una sola base. En la única oportunidad que se pudo secuenciar, se comparó 2 muestras del haplotipo B subtipo B1 (A0008 y T6) que presentaban diferencias en la migración en SSCP, entre ellas se detectaron siete bases nucleotídicas diferentes. Rev. peru. biol. 12(3): 349- 358 (2005)

Nuestros resultados muestran la factibilidad de utilizar la técnica SSCP para detectar mutaciones puntuales conocidas o las desconocidas, estas últimas, las más numerosas entre todas las mutaciones del genoma y las más difíciles de reconocer. Es sorprendente la correlación fortuita entre los haplotipos mitocondriales y los SSCP de la región HVI del ADNmt. Los haplotipos están constituidos de ocho polimorfismos, distribuidos de manera casi uniforme en los 16569 pares de bases (promedio) del ADNmt. Mientras que el SSCP de la región HVI se realiza en un segmento de 394 pares de bases (ver figura 1 en Sandoval et al., 2004). A pesar de tener diferentes «relojes moleculares» en su tasa de mutación, la correlación es mantenida a través del tiempo. Desde el punto de vista práctico, en el establecimiento de haplotipos del ADNmt, el método SSCP podría ahorrar tiempo y dinero. Primero, porque algunos RFLP pueden ser detectados directamente sin necesidad de digerir los segmentos amplificados con la respectiva enzima de restricción. Segundo y más interesante, es el hecho que en la mayor parte de las reacciones probadas aquí para la región HVI, podrían discriminar los cuatro haplotipos mayores del ADNmt amerindio en un solo experimento. Esto implica menos trabajo que la identificación seriada y secuencial de los ocho polimorfismos utilizados para determi357

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En el presente trabajo se encontró que las concentraciones altas de glicerol proporcionan las mejores condiciones de sensitividad en las muestras analizadas (Tabla 2). Sin embargo en las muestras de 183 y 335 pares de bases se observó dificultades en la detección, probablemente debido a que presentan un contenido de G+C inferior al 40% (Tabla 1). Estudios previos han demostrado que una sustitución en regiones ricas en G+C pueden tener un mayor efecto en su movilidad. Nataraj et al. (1999) compararon fragmentos de 100-300 nucleotidos de longitud conteniendo 60% de G+C que fueron fácilmente resueltos por SSCP a temperatura ambiente, mientras otras secuencias de similar tamaño con un contenido de 40% de G+C no pudieron ser detectados. Probablemente por que los enlaces de hidrógeno influencian la complejidad de la estructura terciaria de una hebra individual de ADN en un gel no desnaturalizante.

El secuenciamiento de los fragmentos A0008 y T6 de la región HVI del D-loop mitocondrial y su comparación con otras secuencias similares del haplotipo B, nos ha permitido establecer variaciones (T→C) exclusivas de este haplotipo en las posiciones 16189 y 16217, además, en la secuencia del fragmento A0008 en la posición 16194 muestra la inserción de una citosina, que al compararla con otras secuencias, se constata que es una variación muy rara en el subtipo B1, lo que nos permitiría establecer subgrupos dentro del subtipo B1 basados en la secuencia de la región HVI y los sitios de restricción a lo largo del ADNmt.

Estrada et al.

nar los haplotipos de cada individuo. Lo que podría hacer accesible el estudio del ADNmt a laboratorios con escasos recursos. Cabe la posibilidad que el análisis con SSCP pueda ser extensivo a otros haplotipos definidos con RFLPs prevalecientes en otros continentes. Agradecimientos Este trabajo ha sido financiado con fondos de la Universidad de San Martín de Porres y cofinanciamiento del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología del Perú (CONCYTEC). Nuestro reconocimiento al Dr. Marc Ghislain del Centro Internacional de la Papa por su valioso apoyo.

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