Citometría de flujo
Renée L. Crisp
Citometría de Flujo
Jefa TP Turno Noche
Citometría de flujo Es la ciencia que permite clasificar y separar células vivas determinando propiedades físicas o biológicas de las diferentes poblaciones celulares.
Parámetros celulares que pueden estudiarse: • • • • • • • •
Tamaño celular Complejidad celular interna (organelas, gránulos) Contenido de ácidos nucleicos (DNA, RNA) Proteínas de superficie Proteínas citoplasmáticas Actividades enzimáticas Viabilidad etc.
Citometría de flujo Surge a mediados de la década del 70. Resulta de la integración del desarrollo de otras técnicas fundamentales:
• Microscopía • Tinciones citoquímicas – Tinciones fluorescentes (1880) – Anticuerpos conjugados (1950) – Anticuerpos monoclonales (1975)
• Electrónica – Fotomultiplicador (conversión de fotones en pulsos eléctricos (1945)
• Computación
Muestra Células suspendidas en un medio líquido – Sangre – Cultivos celulares – Tejidos – Tumores sólidos – Alimentos (para estudio de contaminación bacteriana)
Las muestras sólidas se disgregan por digestión mecánica o enzimática
Parámetros a medir • Tamaño • Complejidad interna • Fluorescencia
Proteínas de superficie Contenido de DNA etc. …
La muestra NO requiere tratamiento adicional Se marcan las células con anticuerpos específicos conjugados con fluorocromos
FLUORESCENCIA Fenómeno en el que un compuesto absorbe energía luminosa a una determinada longitud de onda (espectro de absorción) y luego emite el exceso de energía en forma de fotón a una longitud de onda que le es característica (espectro de emisión)
Fluorescein (FITC) Excitation Emisson 300 nm
400 nm
500 nm
495 nm
600 nm
520 nm
(430-520)
(490-630)
Protein
700 nm
Fluorocromos
FITC también llamado FL1 (Isotiocianato de fluoresceina) de fluoresceína Isotiocianato
PE
PerCP llamado FL3 (piridin clorofil proteina)
APC llamado FL4 (aloficocianina).
llamado FL2 ( Ficoeritrina)
Espectros de emisión 300 nm
400 nm
500 nm
600 nm
PerCP FITC
PE
700 nm
APC
Componentes básicos de un citómetro ¾ Cámara de flujo ¾ Fuente de luz y óptica de focalización ¾ Fotodetectores y sistema óptico para direccionar ¾ Sistema electrónico (amplificación y conversión a señal eléctrica) ¾ Computadora (hardware y software)
Cámara de flujo: focalización hidrodinámica Muestra suspensión tridimensional
Injector Tip
Fluido: flujo Sheath laminar envolvente Fluid y estable
Luz de emisión Fluorescence (dispersión y signals fluorescencia)
Focused laser Luz de excitación beam (láser) La muestra es inyectada a presión en el centro de un fluido envolvente que se mueve a alta velocidad que logra ordenar a las células que circulan una a una frente a la fuente de excitación.
FUENTE DE EXCITACIÓN Cada célula es expuesta a la luz de excitación durante 1 a 5 useg Fuente de iluminación pequeña y brillante Determinan los fluorocromos que pueden ser utilizados para conjugar los anticuerpos
Láser
(1 o más) Argón: 334-364, 458, 488, 514 Kriptón: 351-356, 407, 568, 647 Helio – Neón: 633
FUENTE DE EXCITACIÓN y FLUOROCROMOS
Common Laser Lines
350 300 nm
457 488 514 400 nm
500 nm
610 632 600 nm
700 nm
PE-TR Conj. Texas Red PI Ethidium PE FITC cis-Parinaric acid
Desviación de la luz Depende de las características de la partícula
FSC: luz con desviación frontal (Forward Scatter) Depende del tamaño de la partícula
SSC: luz con desviación lateral (Side Scatter) Depende de la granularidad
Fluorescence Activated Cell Sorting 488 nm laser
FALS Sensor Fluorescence detector
Charged Plates
Single cells sorted into test tubes
-
+
Standard Long Pass Filters Light Source
520 nm Long Pass Filter Transmitted Light
>520 nm Light
Standard Short Pass Filters Light Source
575 nm Short Pass Filter Transmitted Light
<575 nm Light
Standard Band Pass Filters 630 nm BandPass Filter White Light Source
Transmitted Light
620 -640 nm Light
Optical Filters Dichroic Filter/Mirror at 45 deg
Light Source
Transmitted Light
Reflected light
Compensación electrónica Los espectros de emisión pueden ser muy próximos Los filtros no son perfectos
Fluorescencia detectada en FL2 pero debida a FITC (FL1)
Los citómetros tienen incorporado un algoritmo matemático que remueve las fluorescencias superpuestas (compensación)
Adquisición Identificación de las poblaciones a ser analizadas FSC vs. SSC Gráficos Scatter vs. Fluorescencia Gráficos Fluorescencia vs. Fluorescencia
Presentación de Datos
Histogramas
Dot Plots
Contour Plots
3D Plots
Histogramas
Dot Plot
Contour Plot
Diagrama de densidad
Diagrama de contornos
3D
Selección de poblaciones
Región11 Región Región22 Región Región33 Región
Algunas células sanguíneas y como identificarlas…. Polimorfonucleares neutrófilos (PMN) Poseen gránulos Æ Alta complejidad interna
Monocitos (Mo) Tamaño similar a PMN Complejidad intermedia Linfocitos (Ly) Pequeño tamaño Baja complejidad interna
Cluster CD 45
Linaje Leucocitos
Función Transducción
(Glóbulos Blancos)
CD 14 CD 64 CD 19 CD 20 CD 22 CD 3 Receptor CD 4 HIV CD 8 CD 56
Monocitos
Receptor endotoxina
Receptor Fc
Linfocitos B
Transducción Canal de Ca++ Molécula de adhesión
Linfocitos T T helper T citotóxicos Natural Killer
Transducción Correceptor MHC II Correceptor MCH I Molécula de adhesión
MUESTRA CD 3 CD 4 CD 8 Linfocito CD 19 Monocito PMN
REACTIVO anti CD 3 anti CD 4 anti CD 8
Recuento de linfocitos T (pacientes HIV +)
•
Selección de la población CD 3 positiva (linfocitos T)
•
% de eventos CD4 y CD8 en la población CD3 +
anti CD 3 anti CD 4 anti CD 8
PLOIDIA Indice de replicación tumoral
Clínicas
APLICACIONES
• Evaluación del estado inmunológico • Tipificación de leucemias y linfomas • Grado de crecimiento tumoral • etc…
Industria alimenticia • Contaminación bacteriana o por levaduras Ecología
• Evaluación del impacto ambiental por determinación de autofluorescencia de algas marinas en muestras seriadas
etc…