Utilidad Del Adn Como Marcador Genético En El Diagnostico De Hemoglobina

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Utilidad del ADN como marcador genético en el diagnostico de Hemoglobina “S”. Salvador Contreras Huerta*, Armando Méndez Pérez*, Yaneth Mabel Rivera Velásquez.** * Laboratorio de Patología Experimental , Facultad de Medicina Zona Xalapa. Universidad veracruzana. ** Laboratorio Clinico. IMSS Clinica 11.

La anemia de células

falciformes (ACF) es una enfermedad hereditaria,

producida por la presencia de la hemoglobina S (Hb S), la cual es una variante de la hemoglobina normal a causa de una alteración de la estructura de la globina beta localizado en el cromosoma 11, debido a un cambio en el codón GAC normal, que pasa a GTG dando como resultado la sustitución del aminoácido Acido glutámico por Valina, en la posición 6 (β6 Glu→Val) el intercambio es consecuencia de una mutación puntual.2,5,6

Fig.1. Representación esquemática del gen loci de la globina, mostrando el locus del gen de la beta globina en el cromosoma 11. (Genética, características de la Hemoglobina S, Anemia Falciforme Y Haplotipos. 2002.)

La presencia de Hb S surge hace miles de años en el África como una medida de protección que confiere una ventaja de supervivencia frente al paludismo o malaria el cual es un padecimiento causado por un parasito del genero Plasmodium que tiene como hábitat los glóbulos rojos.1, 2, 6, 10

La Hb S tiene una alta frecuencia en personas de raza negra y su mestizaje, hoy en día este padecimiento no es único en regiones del África sino que se presenta a nivel mundial, debido al desplazamiento de antepasados a manera de esclavos en los distintos continentes.1, 3,4, 7

Como es citado por muchos autores la Hb S tiene una solubilidad baja y precipita generando filamentos largos que serán responsables de la deformación

de

los

eritrocitos

característicos

en

la

enfermedad.

El

padecimiento es exclusivo de individuos homocigóticos para el gen de la Hb S.

Los glóbulos rojos normales son redondos y flexibles, no así rojos de

los glóbulos

personas afectadas con la enfermedad (homocigóticos de Hb S)

pues estos se tornan duros y deformes cuando liberan el oxígeno, adoptando a menudo

la forma de una letra C o de

hoz (falciformes). Los glóbulos

falciformes quedan atrapados y son destruidos en el hígado y en el bazo. Como consecuencia, se produce una falta de glóbulos rojos, o anemia, la cual, en casos graves, puede provocar palidez, dificultades respiratorias y cansancio. 8,9, 10

Los estudios clínicos para este padecimiento regularmente se realizan mediante técnicas electroforeticas o de inducción empleando el paquete eritrocitario o su contenido (hemoglobina), pero muy pocos utilizan el ADN como marcador genético para identificar la presencia de este, mostrando la importancia que tiene esta metodología no solo para diagnosticar la Hb S, sino para hacer evidente su genotipo mediante el polimorfismo del gen de la beta globina.

El diagnóstico por esta metodología se fundamenta en el aislamiento del ADN codificador de cadenas beta de la hemoglobina y la detección de alguna mutación empleando la enzima de restricción Bsu36I, que fragmenta la hemoglobina normal pero no la Hb S por la mutación.

Para ejemplificarlo mejor realizamos un estudio en 20 pacientes sospechosos de Hb S y 10 personas aparentemente sanas, para ello se siguió el protocolo descrito a continuación.

Fig.2 Protocolo para identificación de HbS mediante el Gen de Beta globina. Fuente Trabajo Recepcional en modalidad de Tesis:Identificación del polimorfismo del gen de Beta globina en pacientes con Hb S.

Los resultados obtenidos son los siguientes:

AMPLIFICACION DEL GEN DE B-GLOBINA PM L1

L2

L3

L4 L5

L6

C-

262pb

Imagen 1.- Amplificación del gen de B-Globina por PCR, se obtiene un fragmento de 262pb. PM. Marcador de peso molecular, L1-3. Pacientes HbS, L4-6. Grupo Control y C-. Control negativo.

POLIMORFISMO DEL GEN DE B-GLOBINA POR RFLP EN PACIENTES CON HbS PM L1 L2 L3 L4 L5 L6 L7 L8 C-

262pb 162pb 100pb

Imagen 2.- Genotipificación del Gen de B-Globina con la enzima Bsu361. PM. Marcador de peso molecular, L1, 3,6-8. Heterocigotos a HbS, L2, 4 y 5. Homocigotos a HbS y C-. Control negativo

BIBLIOGRAFIA

1.- A. Cervera Bravo1, F. Rueda Núñez,Mª Benedit Gómez1, R. LópezVélez,Pérez2, J. Sánchez Guilarte. Drepanocitosis y paludismo: Agravación de la enfermedad de base An Esp Pediatr 1997;47:191-194. 2.- Abreu M, Peñalver JA. Hemoglobinopatía S en la Argentina. Medicina (Bs. Aires) 1992; 52 (4): 341-46. 3. - Ashley- Koch, A. ; Yang, Q. And Olney, R. (1998). Sickle Hemoglobin (HbS) allele and Sickle Cell Disease. CDC= Human Genoma. Epidemiology network. Huge Review. 4. - Beutler E: Disorders of Hemoglobin. In Harrison’s Principles of Internal Medicine 14th Ed. New York: McGraw-Hill, 1998:645–650. 5. - By William N. Poillon, Bak C. Kim, and Oswaldo Castro. Intracellular Hemoglobin S Polymerization and the Clinical Severity of Sickle Cell Anemia. Blood, Vol 91, No 5 (March 1), 1998: pp 1777-1783 6.- Colombo B, Svarch E, Martínez G. Genética y clínica de las hemoglobinas humanas. La Habana: Editorial Pueblo y Educación, 1994. 7.- Dra. Tania García Peralta, Dra. Ileana Nordet Carrera,Dr. Sergio Machín García. Aportes al estudio de la Drepanocitosis. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter 1999; 15(2):96-104 8. - Eaton WA, Hofrichter J: Hemoglobin S polymerization. Adv Protein Chem 40:63, 1990 9. - Emmel, Victor E. 1917. A study of the erythrocytes in a case of severe anemia with elongated and sickle-shaped red blood corpuscles," Archives of Internal Medicine 20: 586-598. 10.- Fabio Salamanca-Gómez.Genes y malaria. Biología Molecular en Medicina. Gac. Méd Méx Vol.141 No. 5, 2005

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