Parasitosis

PARASITOSIS Dr. Reymundo Domínguez Jara.

Generalidades • A inicio del siglo XX quedaron establecidos los principios básicos de la Parasitología. • Actualmente están estudiados los ciclos de vida de los parásitos que afectan al ser humano. • La parasitosis es responsable de la morbilidad, mortalidad del ser humano y del retardo en el desarrollo económico de muchos países • En la identificación coproparasitológica, de hemoparásitos la experiencia juega un papel importante.

• Existen muchos factores que contribuyen a mantener una prevalencia muy elevada como son: los patrones de conducta, los hábitos alimenticios, forma de crianza de los animales, la ingesta de pescado crudo, aguas contaminadas, plantas acuáticas, etc. • Los pacientes con inmunosupresión por diversas causas pueden convertirse en enfermos letales. • Las medidas preventivas como son: adecuada selección de los alimentos, cambios de los hábitos dietéticos, mejora en la situación sanitaria, educación general a la población ayudan a disminuir las enfermedades parasitarias.

Manifestaciones Clínicas • El síntoma más común es la diarrea que puede ser sanguinolenta o purulenta. • Dolor abdominal tipo cólico (Uncinariasis, esquistosomiasis, etc.) • Obstrucción intestinal (Ascaridiasis). • Distensión abdominal, eructos y esteatorrea (Giardiasis) • Eosinofilia del 15-50% en sangre periférica. • Erupción cutánea, urticaria generalizada. • Hepatoesplenomegalia (Trematodes, Leishmania, Chistosoma) • Dolor suprapúbico, poliuria, hematuria (Schistosoma Haematobium) • Dolo torácico, hemoptisis (Trematode, Paragonimius, etc) • Prurito anal (Enterobiasis) • Fiebre, escalofrío (Paludismo, Trypanosomiasis, etc) Cefalalgias (Toxoplasmosis, Cisticercosis, Amebiasis, • Convulsiones, Plasmodium falciparum, etc) • Miocardiopatía (Trypanosomiasis americana) • Tumefacción de piernas, brazos, escroto o elefantiasis (Filariasis)

Manifestaciones Clínicas en Entero Parásitos: •

Intestinales : polimorfismo de la sintomatología – – – –

•

Síndrome diarreico agudo: amebiasis, balantidiasis, coccidiosis Síndrome diarreico crónico: giardiasis, himenolepiasis, ascaridiasis, Síndrome de mala absorción intestinal: uncinariasis, giardiasis Síndrome anémico: Uncinariasis, tricocéfalo, amebiasis, balantidiasis

Extra intestinal: – Síndrome Respiratorio: Ciclo de Loos: Ascaris lumbricoides, Strongyloides stercoralis y Uncinarias. – – – –

Cuadros Alérgicos: prurito anal y nasal Anorexia Disminución del peso corporal: los agentes de diarrea crónica Alteraciones neurológicas: Insomnio Oxiuriasis

Indicaciones para un buen examen parasitológico • En ayunas si el examen es serologico. • Deben ser recolectados en recipientes limpios, de boca ancha, con tapa de rosca. • No haber consumido alimentos que contienen aceite mineral, ni sustancias de contraste. • Ser procesadas inmediatamente.

DIAGNOSTICO DE LABORATORIO

Diagnóstico de laboratorio de las Enteroparasitosis • Características generales de las Enteroparasitosis • Principales protozoosis y helmintiasis intestinales • Ciclos biológicos tipo: a) Entamoeba histolytica b) Taenia saginata c) Enterobius vermicularis d) Anquilostómidos • Principios y utilidad de las técnicas de estudio parasitológico de heces. El examen coproparasitario • Elementos no parasitarios de las heces • El método de Graham

ENTEROPARASITOSIS. Características generales • Tracto digest humano → Numerosos parásitos: • Protozoos

COMENSALES

• Helmintos

PATOGENOS

• Infestación • Vía digestiva (mayoría de casos) • Vía cutánea

• Formas infestantes • QUISTES / OOQUISTES → Protozoos

ENTEROPARASITOSIS. Características generales

Mecanismos transmisión • Infestación por FECALISMO

• Infestación por CARNIVORISMO

• Infestación s/ ciclo ANO-MANO-BOCA

• Infestación CUTANEA Mecanismos transmisión

→ Relación con ciclo biológico

INFESTACION POR FECALISMO • Característico de parásitos de ciclo biológico MONOXENO PROTOZOOS a) PARASITOS • • • • •

Entamoeba histolytica Giardia lamblia Isospora belli Cryptosporidium spp. Balantidium coli

HELMINTOS • Asacaris lumbricoides • Trichuris trichiura • Hymenolepis nana

b) COMENSALES • • • • • • •

Entamoeba coli Endolimax nana Iodamoeba butschlii Chilomastix mesnili Blsatocystis hominis Entamoeba polecki Enterocytozoon spp.

INFESTACION POR FECALISMO

Medio Externo Contam suelo Formas infestantes

Hosp Infestado

Ingestión Quistes Ooquistes Huevos Larvas

(=)

Hosp Susceptible

INFESTACION POR CARNIVORISMO • En parásitos con ciclos biológicos complejos, con uno o varios Hosp. Intermediarios ( Ciclos HETEROXENOS) • Entre los hospedadores existe una relación PREDADOR PRESA • El PREDADOR soporta al parásito en su intest, donde se realiza la f sexuada (Se comporta como Hosp DEFINITIVO) • La Presa se infesta por fecalismo, a partir de las formas que elimina el H D con las heces (hosp intermediario) • En el caso del hombre la infestación se adquiere por ingestión de carnes y pescados crudos, o insuficientemente cocinados

INFESTACION por la piel • Algunas especies de helmintos intestinales (s/t nematodos) • Eliminación de: • larvas • huevos muy desarrollados

Contacto con H. Definitivo

Penetración piel

• Se transforman en LARVAS INFESTANTES (larvas filariformes) Migr viscerales • Ancylostoma duodenale • Necator americanus • Strongyloides stercoralis

Local definitiva en intestino

Diagnóstico de laboratorio de las Enteroparasitosis Consideraciones generales: • Numerosas técnicas de examen coproparasitario

• Finalidad diferente • Aplicación • General • ± Selectiva o específica • Utilidad en función de su capacidad para: • Concentrar elementos parasitarios • Cuantificar la carga parasitaria • Evidenciar difs estadíos evolutivos • Preparar extensiones permanentes

Diagnóstico de laboratorio de las Enteroparasitosis (2) • IMPORTANTE:

• 1) Selección técnica(s) s/ casos • Grupo o especies de parásitos • Fase evolutiva • 2) Examen de varias muestras (3) por paciente

ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES • Evidenciación de parásitos que: • Viven en el tracto digestivo • Realizan su tránsito al m ext a través del mismo • I) No todas las técnicas son adecuadas para todos los parásitos: • Importante conocer ciertos datos: • Procedencia geográfica del enfermo • Resumen HC • Resultados otras pruebas/análisis • Información relativa a trattos recientes • II) Un ex aislado con result negativo no tiene ningún valor eliminatorio

• III) La muestra debe ser examinada rápidamente

ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES

Para descartar una parasitosis intestinal: • Realizar al menos 3 exámenes coproparasitarios seriados (a dias alternos) • Tras una adecuada preparación del paciente • Remitiendo las muestras lo mas rápidamente posible al lab

ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES El examen PARASITOLOGICO DE HECES forma parte del ESTUDIO COPROLOGICO, mas general, que informa sobre: • Aspecto macroscópico de las heces • Consistencia / agua / Veloc tránsito..... • Color (calidad/cantidad flujo biliar) • Presencia de sangre, mucus ...... • Aspecto microscópico restos alimenticios • Presencia mucus, hematíes, leucos, céls epiteliales ...... • Presencia de parásitos (trofoz, quistes, huevos, larvas....) • Elementos micóticos, su relación o proporción con bacterias

ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES El examen COPROPARASITARIO no resulta de utilidad cuando: • La eliminación de los parásitos no se realiza por el intestino • La puesta de huevos no se lleva a cabo en el intestino • Los parásitos son inmaduros o estériles, y no dan lugar a formas de diseminación • Parasitismo por un único individuo (esp dioicas) • Parasitismo reciente (fase adulta no desarrollada)

ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES. Preparación paciente Régimen alimenticio estricto desde 72 h antes a la recogida de la muestra ( UTOPIA ??) Condiciones mínimas: • Evitar medicamentos opacos no absorbibles • Carbón vegetal • Contrastes radiológicos (papilla baritada) • Sustancias grasas (s/t supositorios) • Evitar alimentos con muchos residuos • • • •

Legumbres Frutas de cutícula resistente Vegetales con céls duras Frutos con semillas duras y pequeñas (p ej higos)

ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES. Muestras Considerar adecuadamente las condiciones de : • Toma de muestra • Asepsia? • Momento? / lugar? • Recipiente ? • Envío de muestra • En hospital • Por correo • Conservación de las muestras • Provisional por frio (att trofozoítos amebas) • Definitiva (soluciones fijadoras)

TECNICAS DEL EXAMEN COPROPARASITARIO

• 1) Examen directo de una pequeña porción de heces frescas • 2) Examen después de aplicar un método de concentración • 3) Examen de extensiones o preparaciones permanentes Examen directo Observación microscópica minuciosa de toda la preparación • Objetivo seco débil (10 x) • Objetivo seco fuerte (25-40 x) • Habitualmente no se emplea obj de inmersión • Importante: No diluir demasiado las muestras

TECNICAS DEL EXAMEN COPROPARASITARIO Examen directo SF

Lugol

Movilidad Tinción (Trofozoítos) Vacuolas Núcleos

TECNICAS DEL EXAMEN COPROPARASITARIO 2) Examen post-concentración • Reunión en un pequeño vol los elementos parasitarios inicialmente dispersos en una gran masa de heces • Numerosos métodos • Ninguno evidencia todos los tipos de parásitos, (cada uno tiene sus indicaciones precisas) Métodos físicos

Métodos difásicos

• Por sedimentación • Por flotación

• Empleo de 2 fases no miscibles Agua // Eter o Acetato etilo

METODOS DE CONCENTRACION Métodos físicos • Dilución minuciosa heces en líquido o solución de densidad: • Inferior a la de los parásitos (Técnicas de sedimentación) • Superior (Técnicas de flotación) • Ventajas: • Realización muy simple • Precisan poco material • Inconvenientes: • Procesos largos • Exigen mucha manipulación • No aplicables a series grandes de muestras En ciertos casos se puede acelerar x centrifugación suave

TECNICAS DE CONCENTRACION. Mét de sedimentación simple • Triturar las heces (10-20 g) en agua de grifo • Poner la dil en una probeta de 250-500 cc y rellenar (agua grifo) • Dejar reposar aprox 1 h • Deshechar sobrenadante • Resuspender en agua de grifo • Dejar sedimentar 45 min • Deshechar sobrenadante • Repetir esta op varias veces, hasta que el sobrenadante quede transparente • Recoger y examinar el mat sedimentado. Hacer tres tomas: • Superficie • Media altura • Fondo

TECNICAS DE CONCENTRACION. Mét de flotación Características a considerar: Densidad sol empleada > Dens parásitos ⇒ Concentración en superficie

Película superficial

Importante: • Manipular rápidamente • Impreg huevos operculados ⇒ Sediment

Sulfato de cinz

• Alteración morfol huevos (Identificación)

Sedimento

METODOS DE CONCENTRACION Métodos físicos. Ejemplos Técnicas de sedimentación • Método de sedimentación simple • Método de Faust e Ingalls • Sedimentación en columna alta

Técnicas de flotación • Método de Fulleborn • Método de Willis (flotación en salmuera) • Método de Faust (flotación en sulfato de zinc)

METODOS DE CONCENTRACION

Métodos difásicos • Derivados todos del mét de Telemann (1.908)

• Empleo de dos fases no-miscibles • Fase acuosa (sol. formaldehido) • Fase éter o disolv de lípidos (Acetato de etilo)

• Los elementos fecales y los parásitos se localizan en la fase acuosa o en la interfase agua-éter, en función de una característica, el balance hidrófilo-lipófilo

METODOS DE CONCENTRACION Métodos difásicos • Realización : • Dilución de las heces en agua (o el la fase acuosa) • Adición y emulsión con el éter ( o acet de etilo) • Centrifugación suave

Eter Restos Líp disueltos

Formalina

• Algunos ejemplos: • Método de Telemann • Método de Rivas • Método de Ritchie • Método de Blagg, Schloegel, Mansoer y Khalaf

Sedimento Parásitos

Acetato de etilo Restos fecales y grasa

Formalina

Sedimento (Parásitos)

12

% d e t e c t a d o

Examen directo, conc por flotación y tinción de hematoxilina-férrica Examen directo y conc por flotación Examen directo

Número de exámenes

Incremento de la detección de Entamoeba histolytica en relación al número de muestras fecales examinadas y a las técnicas empleadas

OTROS EXAMENES DIRECTOS PARA DIAGNOSTICO DE ENTEROPARASITOSIS Técnicas del Examen Coproparasitario. Resumen 1.- Observación macroscópica 2.- Observación microscópica 2.1.- Observación microscópica de preparaciones “en fresco” (entre porta y cubre) • Muestras de heces directamente en SF o Lugol • Muestras de técnicas de concentración 2.2.- Observación microscópica de preparaciones teñidas, permanentes o no, que permiten la conservación y la observación cuidadosa y detallada de los parásitos

OTROS EXAMENES DIRECTOS PARA DIAGNOSTICO DE ENTEROPARASITOSIS TINCIONES ACIDO-ALCOHOL RESISTENTES • Utilidad: Demostración de ooquistes de Cryptosporidium spp. Evidenciación de Cyclospora spp. • Aplicables a frotis de heces (tb ciertos concentrados) • Técnicas: Las mas empleadas son la de KINYOUN y una modificación de la ZIEHL-NEELSEN TINCION DE HEMATOXILINA-FERRICA • Utilidad:

Observación detallada de quistes, pero s/t de trofozoítos de protozoos. Si se realiza montaje, buena colección permanente Exige una realización cuidadosa,

COLORACIÓN DE KINYOUN (Cryptosporidium // Cyclospora) • Fijación frotis: Metanol 30 seg •Tinción : 5 min (frio) con sol de Fuscina básica • • • •

Fusc básica Fenol Etanol (95%) A dest

4g 8g 90 ml 100 ml

• Lavado • a) Etanol 50%: 3-5 min • b) Agua corriente • Decoloración: Acido sulfúrico 1%: 2 min • Contracoloración: Azul metileno Loeffler: 1-2 min • Azul de metileno • Alcohol 95% • KOH 0,01%

0,3 g 30 ml 100 ml

ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES. Elementos no parasitarios de las heces • Restos alimenticios semi-digeridos • Células epiteliales (mucosa intestinal) • Células sanguíneas • Leucocitos (úlceras intestinales) • Macrófagos ≈ amebas patógenas • Hematíes • Bacterias • Hongos

Elementos no parasitarios de las heces (2) RESTOS ALIMENTICIOS

• Tejido conjuntivo • Fibras musculares estríadas (carne) Att tamaño / ángulos • Grasas neutras → Glóbulos refringentes tamaño variable • Acidos grasos → Agujas finas • Almidón • Crudo: Granos en capas concéntricas • Céls reserva amilácea (s/ procedencia) • Celulosa • Digerible: Masas celulósicas (céls reserva) • No digerible: Traqueídas, pelos vegetales, polen etc CRISTALES

• Origen alimentario (oxalato de calcio) • Endógeno (Ox calcio, fosfato amónico-magnésico, Charcott-Leyden) • Medicamentos

OTROS EXAMENES DIRECTOS PARA DIAGNOSTICO DE ENTEROPARASITOSIS 1.- Examen directo de líquido duodenal • Se obtiene por sondaje duodenal o con càpsula entérica o test del cordón"“Enterotest” • Observación • Fresco (directo o tras centrifugación) • Extensiones (frotis) coloreados (tinc AAR) • Utilidad / Rendimiento • Trofozoítos de Giardia lamblia • Ooquistes de Isospora y Cryptosporidium • Huevos de Fasciola hepatica • Larvas de Strongyliodes stercoralis

2.- Técnica de Graham (Mét de la cinta adhesiva o espátula adhesiva) • Método mas empleado para el diagnóstico de la oxiuriasis o enterobiasis (Enterobius vermicularis) • Observación microscópica del material recogido de la zona perianal, por aplicación de una sup adhesiva (celofán o similar) • La cinta se dispone sobre un soporte rígido (depresor lengua), con la sup adhesiva hacia el exterior • Se aplica varias veces sobre la piel, en los márgenes anales • Se envia al laboratorio y se observa a microscopio (10X) IMPORTANTE • Realizar al menos 3-5 tomas antes de informar un resultado negativo • Realizar la toma de muestra a 1ª hora por la mañana, antes de salir de la cama

Diagnostico Serologico de las enfermedades Parasitarias • Es aplicable para evaluar las enfermedades parasitarias que requieren diferentes exámenes a los exámenes de rutina, ejm:

Protozoo Intestinales 1.- Amebas: - Entamoeba histolytica. - Entamoeba coli. 2.- Flagelados: - Giardia lamblia. - Chilomastix mesnili. - Dientamoeba fragilis 3.- Ciliados: - Balantidium coli 4.- Coccidios: - Cryptosporidium. - Isospora belli. 5.- Otros: - Microsporidium.

Amebiasis y Entamoeba histolytica • La disentería amebiana es causada por cepas de E. hystolitica. • Es transmitido por la vía fecal oral directa a través del agua o alimentos contaminados, indirecta por vectores mecánicos. • De 5 – 50 % de los individuos en áreas endémicas transportan el E. hystolitica intestinal de estos el 10% desarrollan enfermedad disenterica invasiva y el 0.5% el absceso hepático de aquí el 2 al 10% fallecen pueden llegar al 70% en la colitis fulminante.

Amebas Intestinales - Entamoeba histolytica. - Entamoeba coli. - I. bustschelii. - Endolimax nana.

Flagelados Intestinales - Causan enfermedad gastrointestinal. - Ocasionan un problema de salud publica mundial. - Ciclo de vida se completa por vía de transmisión fecal- oral. Quistes: supervivencia prolongada, se encuentran en arroyos y pozos, partes de cloacas inadecuadas. Trofozoitos: de esta manera ocurre la multiplicación dentro del ser humano.

Ciliados Intestinales - Único miembro patógeno en seres humanos: Balantidium coli. - Transmisión: vía fecal-oral. - No necesita huésped intermediario. - Se halla frecuentemente en el cerdo. - En el ser humano la infestacion es no invasiva, asintomática y autolimitada. - Los debilitados con carga trofozoitica producen: disentería sanguinolenta y deshidratación severa. - Puede producir: ulceras intestinales, Linfaadenitis mesentérica, rara diseminación al hígado pulmones y otros órganos.

Coccidios Intestinales

NEMATODES CARACTERISTICAS GENERALES • 1.Gusanos elongados, cilíndricos, no segmentados y ahusado en ambos extremos. • 2.Tamaño variable, miden entre 5 mm a 100 cm. • Sexos separados, el macho es más pequeño que la hembra. • Morfología. • Algunas especies son parásitos importantes de plantas y animales.

• LOCALIZACION a)INTESTINAL: Intestino delgado: AscarisAscaris AncylostomaAncylostoma/ Necator Strongyloides Intestino grueso: Enterobius Trichuris

b)TEJIDOS • Trichinella (larva): músculo, cerebro, pulmones • Toxocara canis (larva): hígado, cerebro, pulmones, ojos, etc. • Anisakis Anisakis: intestino

PALUDISMO El parásito: Género Plasmodium Plasmodium vivax Plasmodium malariae Plasmodium falciparum Plasmodium ovale

TAXONOMÍA REINO PROTISTA SUBREINO PROTOZOA FILUM APICOMPLEXA CLASE SPOROZOA SUBCLASE COCCIDIA ORDEN EUCOCCIDIIDA FAMILIA PLASMODIIDAE

PALUDISMO • Definición: Infección parasitaria metaxénica, causada por especies del Género Plasmodium: (Plasmodium vivax, Plasmodium malariae, Plasmodium falciparum y Plasmodium ovale) y transmitida por las hembras de mosquitos del Género Anopheles. Existe transmisión no vectorial transplacentaria, transfusional

del

parásito:

El parásito: Plasmodium. Características Generales

1. Esporozoario: reproducción asexual y sexual. 2 Reproducción asexual en el Hombre (hospedero intermediario) y reproducción sexual en el Anopheles (hospedero definitivo). 3. El metabolismo de carbohidratos lo hace por vía glicolítica. 5. Variabilidad genética según zonas geográficas

MALARIA El parásito: Ciclo biológico HOMBRE:

ANOPHELES:

Hospedero intermediario Hospedero definitivo Reproducción asexual Reproducción sexual Reservorio Vector 1.

CICLO EXOERITROCITARIO:

3. CICLO ESPOROGÓNICO

HIGADO

2.

CICLO ERITROCITARIO: GLOBULOS ROJOS

FASE ESQUIZOGÓNICA FASE GAMETOGÓNICA GAMETOCITIOS

ESPOROZOITOS (FORMA INFECTANTE PARA EL HOMBRE)

MALARIA EL HOMBRE SUCEPTIBLE MECANISMOS DE TRANSMISIÓN

1.

VECTORIAL: picadura del Anopheles hembra infectado e inoculación del esporozoito.

1.

NO VECTORIAL:

2.1. Transfusión sanguinea: hay portadores de Plasmodium asintomáticos :Malaria por transfusión 2.2. Transmisión transplacentaria: Malaria congénita 2.3. Compartir jeringas: Malaria por drogadicción

PALUDISMO El parásito Ciclo exoeritrocitario - Hombre • Esquizonte tisular: 1. Ubicación: hepatocito 2. Constitución: nucleos múltiples rodeados de citoplasma (merozoitos) 3. Multiplicación: merozoitos invaden otros hepatocitos 4. Después de 6-12 días, los merozoitos pasan a la circulación general (criptozoitos). 5. En P. Vivax y P. Ovale algunos esquizontes permanecen en el hígado como hipnozoitos (responsables de las recaidas)

MALARIA El parásito Ciclo eritrocitario - Hombre

• Fase esquizogónica: 1. Trofozoito o anillo: Ubicación intraglobular. Vacuola citoplasmática cromatina nuclear. Pigmento malárico. Gránulos: Schúffner (P.vivax). Maurer(P. malariae). Zieman (P. falciparum)

2. Esquizonte : Pigmento malárico Inmaduro: división de cromatina y citoplasmática Maduro: merozoitos formados que invadirán otros glóbulos rojos

MALARIA PATOLOGÍA Plasmodium falciparum

Capilar cerebral

MALARIA El parásito Ciclo eritrocitario - Hombre •

FASE GAMETOGÓNICA:

1.

Merozoitos que no evolucionan a esquizontes sino a gametocitos: microgametocito (masc.) y macrogametocito (fem.)

2.

Macrogametocito: Cromatina nuclear como masa única densa

Macrogametocito 3.

Microgametocito: Cromatina nuclear como masa única laxa

Microgametocito

MALARIA El parásito Ciclo esporogónico - Anopheles •

ESTÓMAGO : Los macrogametocitos maduran a macrogametos. El microgametocito se exflagela, cada flagelo es un microgameto conteniendo cromatina nuclear. En la fecundación , el microgameto penetra en el macrogameto y se forma un huevo o zigote que como ooquineto llega a la pared delñ estómago, la atraviesa y se ubica debajo del epitelio, forma el ooquiste en cuyo interior se desarrollan los esporozoitos y al estallar el ooquiste, ellos, por la hemolinfa llegan a las glándulas salivales

MALARIA El parásito Ciclo esporogónico - Anopheles

Ooquistes en la parte externa de la pared estomacal

MALARIA EL VECTOR: Anopheles •

El Género Anopheles

•

Pertenece a la Clase Insecta, Orden Diptera, Familia Culicidae. La metamorfosis es completa. La hembra coloca los huevos sueltos, en agua, allí se desarrollan las larvas y las pupas. El adulto o imago hembra es hematófaga y vector de los Plasmodium del hombre

•

Las especies antropofílicas son las más importantes

Diagnóstico Diagnóstico de de Malaria Malaria Dx. Clínico LABORATORIO Parasitológico

•Gota Gruesa

•Inmunocromatografía.

•Microconcentración

•IFI, Elisa

•Naranja de Acridina

Molecular

Inmunológico

•

PCR

GOTA GRUESA Y FROTIS

PRUEBAS RÁPIDAS INMUNOCROMATOGRAFÍA

ANTÍGENO: DEHIDROGENASA LÁCTICA DE P.vivax Y P.falciparum ANTICUERPO: ANTICUERPO MONOCLONAL CONTRA LA DEHIDROGENASA LÁCTICA CONTROL: DEHIDROGENASA LÁCTICA

MALARIA DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO PCR

P.ovale

P. falciparum P.malariae P.vivax P.molecular

PATOLOGÍA •

FASE ESQUIZOGÓNICA EXOERITROCITARIA (Higado) Hepatomegalia discreta con poca sintomatología, ocasionalmente insuficiencia hepática, fiebre y malestar general.

•

FASE ESQUIZOGÓNICA ERITROCITARIA

•

1. LOS GLÓBULOS ROJOS 1.1. Ruptura de glóbulos rojos parasitados: acceso palúdico-shock anafiláctico y anemia. 1.2. Hepato-esplenomegalia (hipertrofia del sistema retículo endotelial) 1.3. La destrucción intravascular puede causar hemoglobinuria como en la infección por Plasmodium falciparum. 1.4. Adherencia de los glóbulos rojos parasitados por P. falciparum a los capilares viscerales impidiendo la circulación sanguínea

SINTOMATOLOGÍA •

•

PALUDISMO AGUDO 1. Primoinfección palúdica: a los 8 a 25 días (PIG) 1.1. Acceso palúdico: duración de 8 a 12 horas (escalofrio, fiebre y sudoración). Cada 48 horas: P. Vivax (terciana, benigna) cada 72 horas, P. Malariae (cuartana) generalmente cada 48 horas, P. Falciparum (terciana maligna) 1.2. Paludismo grave por P. Falciparum. Lo más frecuente es: Anemia, ictericia, coma y la insuficiencia renal. Además hipoglicemia PALUDISMO CRÓNICO Fiebre, anemia, hepatoesplenomegalia.

SINTOMATOLOGÍA •

•

PALUDISMO AGUDO 1. Primoinfección palúdica: a los 8 a 25 días (PIG) 1.1. Acceso palúdico: duración de 8 a 12 horas (escalofrio, fiebre y sudoración). Cada 48 horas: P. Vivax (terciana, benigna) cada 72 horas, P. Malariae (cuartana) generalmente cada 48 horas, P. Falciparum (terciana maligna) 1.2. Paludismo grave por P. Falciparum. Lo más frecuente es: Anemia, ictericia, coma y la insuficiencia renal. Además hipoglicemia PALUDISMO CRÓNICO Fiebre, anemia, hepatoesplenomegalia.

SINTOMATOLOGÍA

• •

•

•

PORTADOR Es asintomático PALUDISMO Y EMBARAZO Es más frecuente las alteraciones en la infección por P. Falciparum Hay secuestro de glóbulos parasitados en los vasos de la placenta. Se observan partos prematuros, abortos y niños infectados. PALUDISMO Y TRANSFUSIÓN SANGUINEA Se ha observado sobrevivencia por 15 días en sangre refrigerada. El recipiente infectado desarrolla la forma eritrocitaria del parásito. PALUDISMO MIXTO Se observa en áreas endémicas

HISTORIA DEL PALUDISMO EN EL PERÚ •

POSIBLEMENTE FUE TRAÍDA A AMÉRICA POR EUROPEOS Y ESCLAVOS EN LOS ÚLTIMOS 500 Años

•

LA CORTEZA DE LA QUINA O CHINCHONA FUE USADA POR LOS ABORÍGENES DEL FUTURO PERÚ PARA EL TRATAMIENTO DE LA MALARIA HACE 350 AÑOS

•

LOS JESUITAS MISIONEROS EN SUDAMÉRICA APRENDIERON DE LAS PROPIEDADES ANTIMALÁRICAS DE LA CORTEZA DEL ARBOL DE LA CHINCHONA Y LA INTRODUJERON EN EUROPA POR LOS AÑOS 1630 Y EN LA INDIA EN 1657 CON EL NOMBRE DEL ¨POLVO DE LOS JESUITAS¨

LOS

PALUDISMO EN EL PERÚ ANTECEDENTES •

LA MALARIA ES DESCRITA CON MAYOR PRECISIÓN DURANTE LA ÉPOCA COLONIAL.

•

LA DISTRIBUCIÓN DE LA MALARIA SE EXTENDÍA EN LOS VALLES DE LA COSTA, VALLES INTERANDINOS Y EN LA SELVA

•

DESCUBIERTAS LAS 4 ESPECIES DE Plasmodium: vivax, malariae, falciparum y ovale, SÓLO SE DEMUESTRA LA PRESENCIA DE LAS TRES PRIMERAS, ASÍ COMO DIVERSAS ESPECIES DE Anopheles, EL INSECTO VECTOR

•

LA MALARIA SE CONSIDERA UNPROBLEMA DE SALUD PÚBLICA POR: ‘ NÚMERO DE PACIENTES ‘ PÉRDIDA DE LA FUERZA LABORAL ‘ IMPACTO EN LA ECONOMíA DEL PAíS ‘ POBLACIÓN CON MAYOR RIESGO: LOS NIÑOS

PALUDISMO PREVENCIÓN • PREVENCIÓN INDIVIDUAL Repelentes Mosquiteros Medicación profiláctica • PREVENCIÓN COMUNITARIA Insecticidas Protección de la vivienda Colaborador voluntario

PALUDISMO- CONTROL •

En la década de los 50 hubo un optimismo universal acerca de la posibilidad de erradicar la malaria de la tierra, basándose en conceptos que se consideraron tan sólidos que constituyeron lo que se llamó los 3 pilares de la doctrina de erradicación de la malaria:

•

1. El agotamiento espontáneo del parásito: que consideraba que las especies de Plasmodium se eliminan por los mecanismos defensivos del hospedero en un plazo determinado, 1 año para P. falciparum, 3 para P. vivax y 5 para P. malariae. 2. El vector de la malaria es chupador y reposador intradomiciliario: consideraba que el Anopheles, vector de los Plasmodium, que transmite el parásito, ingresa al domicilio, pica y antes de abandonar el domicilio reposa en la pared. 3. El DDT es un insecticida de acción residual que persiste por tiempo prolongado donde es rociado: lo que significaba que hecho el rociado en las paredes de la casa, este persistiría allí el tiempo suficiente como para que los mosquitos que se posen en las paredes sufran el efecto del insecticida.

•

•

PALUDISMO - CONTROL •

La información acumulada en las últimas décadas indica pues, que los pilares de la doctrina de erradicación de la Malaria establecidas en la década de los 50 no resultaron ser lo suficientemente sólidos, lo cual impidió alcanzar la erradicación del parasitismo en el mundo, pero sí hubo una extraordinario reducción del problema.

•

En nuestro país, el Programa de Erradicación de la Malaria que fue vertical logró desarrollar el programa en mejores condiciones en los valles de la costa que en la Selva. Problemas logísticos, económicos y de participación comunitaria, principalmente, determinaron que el programa de rociado no fuera cumplido en la forma planificada, lo cual impidió cubrir 100% las casas con el DDT, situación que fue más evidente en la Selva, donde incluso hubo áreas sin rociar.

•

De acuerdo a los patrones internacionales, Tacna fue el único departamento del país en que se declaró erradicada la Malaria.

PALUDISMO- CONTROL •

La mejor droga antimalárica, en el ámbito mundial ha sido la cloroquina, droga básica en los programas de control de las diversas clases de Malaria; sin embargo, la aparición de la resistencia, principalmente, de P. falciparum a la cloroquina ha abierto la necesidad de buscar alternativas. En nuestro país, este fenómeno de la resistencia se ha ido presentando en varias regiones endémicas de malaria, lo cual hace más fácil, la aparición de las complicaciones y por consiguiente el agravamiento del problema, que se torna más complejo cuando se observa que a la droga de segunda línea como la mezcla de sulfodoxina-pirimetamina ya no es útil en la zona de Loreto.

•

Las medidas de control indican que debe diagnosticarse precozmente el caso y tratarlo, disminuyendo así a los reservorios. La lucha vectorial es otro importante aspecto en el control, así como la educación sanitaria para conseguir la participación comunitaria.

Areas Centinelas para la Vigilancia de la Resistencia a los Antimaláricos en el Perú

Ecuador

Colombia

Brasil

Bolivia

Chile