Organica-informes 2.docx

PRÁCTICA N°02 “CARBOHIDRATOS”  RESULTADOS DE PRUEBA DE MOLISH La formación de un anillo de color violeta en la interfase indicará que la reacción es positiva.

Muestra Jarabe Ibuprofeno

PRUEBA DE MOLISH (C10H7O/H2SO4) Compuesto Características MALTITOL C12H24O11

Resultado Positivo Se observó el anillo color violeta.

Caramelo

GLUCOSA FRUCTOSA C6H12O6

Positivo Se observó el anillo color violeta.

Toffee

SACAROSA C12H22O11

positivo Se observó el anillo color violeta.

 REACCION DE MOLISH

 RESULTADOS DE PRUEBA DE FEHLING La reacción será positiva si la muestra se vuelve de color rojo-ladrillo. La reacción será negativa si la muestra queda azul, o cambia a un tono azulverdoso. PRUEBA DE FEHLING CuSO4 + Tartrato de sodio y potasio/NaOH Muestra Compuesto Características Resultado JARABE MALTITOL Rx NEGATIVA IBUPROFEN C12H24O11 No reductor O

AZÚCAR

GLUCOSA

Rx POSITIVA reductor

Toffee

SACAROSA

RX NEGATIVA

C12H22O11 No reductor

Miel de abeja SACAROSA C12H22O11

Rx NEGATIVA PARA FEHLING No se observa presencia de azúcar reductor. La miel esta compuesta por sacarosa, por lo tanto es no reductor.

 REACCIÓN DE FEHLING: Se basa en el carácter reductor de los monosacáridos y de la mayoría de los disacáridos (excepto la sacarosa). Si el glúcido que se investiga es reductor, se oxidará dando lugar a la reducción del sulfato de cobre (II), de color azul, a óxido de cobre (I), de color rojo-anaranjado.

 CuSO4  2 NaOH   Cu( OH )2  Na2 SO4

 Cu( OH )2  RCOH   Cu2O  RCOOH  H 2O( rojoladrillo )

 RESULTADOS DE PRUEBA DE LUGOL Si la disolución del tubo de ensayo se torna de color azul-violeta, la reacción es positiva.

Muestra IBUPROFENO

PAN

PRUEBA DE LUGOL I2 + KI /H2O Compuesto Características MALTITOL C12H24O11

Resultado Rx NEGATIVA Ligeramente anaranjado

ALMIDÓN C6H10O5

Rx POSITIVA Color violeta

 REACCION CON LUGOL:

Identificar polisacáridos. La coloración producida por el Lugol se debe a que el yodo se introduce entre las espiras de la molécula de almidón. No es, por tanto, una verdadera reacción química, sino que se forma un compuesto de inclusión que modifica las propiedades físicas de esta molécula, apareciendo la coloración azul violeta.

El yodo se introduce en las espiras de la molécula del almidona, por lo cual este toma una coloración oscura. El almidón es coloreado de azul en presencia de Lugol, debido a una absorción o fijación del I-3 sobre las unidades de glucosa de la amilosa

 CONCLUSIONES 

La reacción de Molish es un método cualitativo la cual se utiliza para poder observar la presencia de carbohidratos en una muestra desconocida y a su vez poder determinar si en la muestra se forma de manera inmediata el precipitado con el óxido cúprico (Cu2O) tendríamos un monosacárido y si se tarda un tiempo más prolongado en formar el precipitado se trataría de un disacárido.



La reacción de Fehling es un tipo de prueba usada para identificar azúcares reductores, la cual se fundamenta en el carácter reductor del grupo carbonilo presente en el grupo funcional aldehído.



Se comprobó que el reactivo de Fehling si identifica azúcares reductores, ya que dio positivo el resultado de glucosa debido que esta tiene un

carbonilo libre el cual permite la mutarrotación. También se identificó que la reacción fue de oxidación provocando un precipitado de color rojo ladrillo que es propio del óxido cuproso que se formó y con la sacarosa no tuvo ningún resultado físico visible debido que este es un azúcar no reductor. 

Los carbohidratos son fundamentales para nuestra dieta diaria, y aunque sean los que más beneficios nos aportan, no se deben consumir en exceso ya que estos tienden a convertirse en energía almacenada.



La prueba de Lugol se utiliza para identificar polisacáridos, como el almidón, no es que este no reaccione con el Lugol, si no su acción se basa en la absorción de esta sustancia en frío. El color anaranjado de la otra muestra es característica del Lugol adicionado y no de una reacción con este.



Esto es muy importante en nuestra carrera para poder diferenciar que tipos de reacciones se generan en nuestro organismo por la acción de azúcares y reactivos.



Concluimos que las pruebas que realizamos en esta práctica, se usan para poder detectar carbohidratos, pentosas, aldosas, cetosas y así como la acción reductora de azúcares. Aunque por falta de insumos no se realizaron las siguientes pruebas: reacción de bial, reacción de seliwanoff e investigación de azúcares no reductores.

 BIBLIOGRAFIA        

Azúcares Reductores Wikipedia Org. [Citado el: 16 de Mayo de 2014.] http://es.wikipedia.org/wiki/Az%C3%BAcar_reductor Reactivo de Fehling. Wikipedia Org. [En línea] [Citado el: 7 de Mayo de 2014.] http://es.wikipedia.org/wiki/Reactivo_de_Fehling. http://www.cosmos.com.mx/d/tec/4dvj.htm http://www.vitonica.com/alimentos/azucar-o-miel http://www.slideshare.net/thatik/determinacin-de-puntos-de-fusin-ypuntos-de-ebullicin

PRACTICA N°03 “FERMENTACIÓN ALCOHÓLICA DE AZÚCARES”  RESULTADOS:

Sol. Sacarosa + Sol. de levadura

ETANOL Y CO2

P O S I T I V O

 REACCIONES:

 CONCLUSIONES: 



En la fermentación en ausencia de oxígeno el azúcar es convertido en etanol y CO2 por la levadura, además se demostró el uso total del azúcar para la fermentación. La levadura no interviene directamente en la fermentación, sino que segrega enzimas que actúan sobre el azúcar y la convierten en etanol y dióxido de carbono.



Las levaduras por diferentes sistemas enzimáticos suelen liberar su energía partiendo de los carbohidratos.



La fermentación alcohólica es un proceso necesario en la obtención del etanol para la fabricación de vino y otras bebidas alcohólicas. El CO2 que se obtiene como producto en es útil en la industria del pan ya que permite que la masa se expanda. La fermentación de los líquidos azucarados produce alcohol. El grano de la cebada se fermenta en presencia de levadura y se crea cerveza. La fermentación es propia, solamente de los microorganismos y de algunas levaduras. Se produce la fermentación en la mayoría de las células de los animales, excepto en las neuronas que mueren rápidamente si no pueden realizar la respiración celular.

  

 REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS:    

https://biotecnologia.fundaciontelefonica.com/.../la-fermentacionalcoholica. www.monografias.com › Biología. farmaciaulat.blogspot.com/p/fermentacion.html www.academia.edu/3710618/Laboratorio_de_Fermentación

PRACTICA N°4 “ALMIDÓN” Obtención de almidón: Para la obtención de almidón necesitamos cualquier vegetal que sea rico en almidón por ejemplo la papa.

 RESULTADOS POR HIDROLISIS

MINUTOS DE EBULLICIÓN

TUBOS

REACTIVOS

COLOR

1

1

LUGOL

Azul profundo

2

2

LUGOL

Azul oscuro

3

3

LUGOL

Azul

4

4

LUGOL

Azul

5

5

LUGOL

Violeta oscuro

6

6

LUGOL

Violeta

7

7

LUGOL

Rojo oscuro

8

8

LUGOL

Pardo oscuro

9

9

LUGOL

Pardo oscuro

 REACCIÓN QUÍMICA

Almidón HCl   Glu cos a   Dextrinas calor calor

 CONCLUSIONES



 

Se pude apreciar que en los primeros tubos la coloración es más oscura ya que el tiempo de reacción es menor y queda aún almidón, en cambio en los últimos tubos la reacción es por más tiempo por lo tanto la coloración es más clara. Esta degradación de color se debe a la fragmentación del almidón. El color rojizo de uno de los tubos es porque ya está hidrolizado y solo tiene glucosa

 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 

http://www2.scielo.org.ve/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S000155042004000100011&lng=pt&nrm=iso&tlng=pt



http://www.enbuenasmanos.com/articulos/muestra.asp?art=261



http://www.quiminet.com/articulos/que-es-la-ciclodextrina-32038.htm

PRACTICA N°5 “EXTRACCIÓN DE UN ADN VEGETAL”

 PARTE EXPERIMENTAL

Pesamos 50 gr. de alverja; posteriormente lo licuamos; agregamos sal y agua. Se vierte la solución de células a través de un colador a un vaso precipitado. Añadimos detergente y dejamos reposar por 10 minutos. Usamos un zumo de piña que contribuye a eliminar las proteínas que rodean el ADN. Agregamos alcohol para concentrar el ADN, ya que este es soluble en agua.

 RESULTADOS

Obtuvimos un gran ADN vegetal

 CONCLUSIONES Al realizar el procedimiento adecuadamente, resulta que las fibrillas de ADN comenzaron a salir, de un color blanco precipitado por sobre el alcohol (mezcla heterogénea). Con esto podemos saber cómo es el procedimiento del extracto del ADN, así como si estructura de una forma fácil y sencilla.  REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 

http://www.buenastareas.com/ensayos/Extraccion-De-Adn Vegetal/4014169.html



https://docs.google.com/viewer?a=v&q=cache:s03161stFv0J:www.porquebi otecnologia.com.ar/adc/uploads/pdf/1Extraccion_ADN_vegetal.pdf

PRÁCTICA N° 06 “AMINOÁCIDOS”  RESULTADO

SOLUCIÓN

CARACTERISTICA

Ovoalbumina+ nihidrina+calor

Formación de espuma, sin precipitado y transparente.

Carne + nihidrina +calor

Forman precipitado color morado

Colapiz + nihidrina + calor

Se forman dos fases; una transparente y morada por encima

Alanina + agua + agitación + nihidrina+ calor

Solución de color morado

Glicina + Agua + calor + agitación

Solución de color azul oscuro

RESULTADO

Alanina + calor

Color azul marengo

Metionina + agua + agitación

Precipitado amarillento en el fondo

Metionina + calor

Fase amarillenta pequeño precipitado en el fondo

 REACCIONES CON NIHIDRINA

O

R HC

O OH

NH2

COOH aminoacido

R OH

+

+ OH O ninhidrina forma oxidada

H O ninhidrina forma reducida

NH3

+

C H

O

+ CO2

O

OH N

Coloración violeta

O

O

purpura de Rhuemann

 REACCIÓN XANTOPROTEICA

2 HNO3

CH2

O

OH

OH

CH

CH2

COOH

CH

N

O2N

NO2

O2N

Tirosina

O

CH

O2N

CH2

COOH

CH

O

COOH

NH2 sal sodica de Dinitrotirosina

Dinitrotirosina forma quinoidea

Dinitrotirosina

ONa N

NH2

NH2

NH2

O NaOH

CH2

COOH

OH

NARANJA

AMARILLO

 REACCIÓN DE MILLÓN SOBRE LA TIROSINA

O

OH HNO3 + HgNO3

CH2

CH NH2

Tirosina

COOH

OHg N

O2N

CH2

CH

O

COOH

NH2 Sal de mercurio del derivado nitrado de Tirosina

 REACCIÓN DE ADAMKIEWICZ SOBRE TRIPTÓFANO El método se basa en la capacidad del triptófano de reaccionar, en medio ácido, con el ácido glioxílico con la formación del compuesto de color rojo-violeta. COOH CH

COOH

NH2

CH

NH2

H2N

COOH

COOH

CH

CH

NH2

Para la ejecución de la reacción usan ácido acético glacial, el cual como CH2 CH2 CH2 CH2 O impureza contiene ácido glioxílico. En calidad de un medio que elimina agua, en O la reacción se utiliza concentrado. C sulfúrico + + Cácido N H

H

OH

N H

N H

CH

COOH

N H

A. Reacción Triptofano

deacido Foly sobre aminoácidos que contienenProducto azufre glioxilico Triptofano de condensacion del Triptofano con el acido glioxilico débilmente unido (cisteína, cistina)

 CONCLUSIONES 

 

La -alanina también llamado ácido 3-aminopropanoico, es un aminoácido no esencial, que puede sintetizar nuestro organismo, y que se encuentra de forma natural en algunas proteínas de los alimentos, como la carne. Se identificó algunos de los aminoácidos presentes en los alimentos empleados en la práctica, aplicando las reacciones según el grupo funcional del aminoácido. La D y L cisteína y en la D y L cistina son ópticamente activos, pero existe un caso de simetría molecular, la llamada forma "meso" de la cistina,

 

formada por una L-cisteína unida a D-cisteína, anulándose la posibilidad de rotación óptica. La Ninhidrina (Hidrato de Tricetohidrindeno) es el reactivo más empleado en la detección y cuantificación de aminoácidos. Durante la reacción, se consumen dos equivalentes de Ninhidrina por cada aminoácido. La cistina se forma por la condensación de dos moléculas de cisteína a través de los grupos tiol. La oxidación de los grupos tiol forma la estructura conocida como el puente disulfuro. Los puentes disulfuro participan en forma importante en la estabilización de la estructura tridimensional de las proteínas, cuando se forman entre dos regiones de una misma proteína, y en la asociación cuando se forman entre dos cadenas distintas. En general, las proteínas son más estables cuando tienen más puentes di sulfuro.

 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS         

Hill CA,Harris RC et. al "Influence of beta -Alanine supplementation on skeletal muscle carnosine concentrations and high intensity cycling capacity" Aminoacids,2007 Feb. VELASQUEZ, MARIA. ORDORICA, MIGUEL. Estructura. Las proteínas Bioquímica Médica I. Fessenden, R. “Química Orgánica” 2006 Editorial Iberoamericana. México McMurry, J. “Química Orgánica” 2009, 7ª ed. Ed.Thomson Paraninfo. México, Solomons, T (1998). “Química Orgánica”. México: Editorial Limusa Streitwieser, A (1999). “Química Orgánica”. España: Editorial Mc Graw Hill (tercera edición) Voet, J. “Bioquímica”. 2006, Editorial Medica Panamericana, España Vollhardt, K. Peter C.. “Química orgánica: estructura y función” 2007, 5ª ed. Ed. Omega, Barcelona Wade, L G “Química Orgánica” 2004 Editorial Pearson/ Prentice Hill, 5ª ed. Madrid

PRÁCTICA N° 07 PROTEINAS

OVOALBUMINA

      

CALOR AC. INOGANICO AC. ORGANICO SOLVENTE MET. PESADO AGITACIÓN BIURET

 RESULTADOS COMPUESTO

CARACTERISTICA

RESULTADO

SOLUCION DE OVOALBUMINA+ BIURET

COLOR MORADO

POSITIVA

COLAPIZ+ BIURET

COLOR MORADO

POSITIVA

SOLUCIÓN DE CARNE + BIURET SOLUCION DE OVOALBUMINA + HNO3

COLOR MORADO OSCURO COLOR AMARILLO PÁLIDO

CARNE+ HNO3

DESNATURALIZADO

POSTIVA

SOLUCION DE OVOALBUMINA + ACIDO TRICLORO ACÉTICO

DESNATURALIZACIÓN

POSITIVA

FORMACION DE PRECIPITADO SOLIDO BLANCO

POSITIVA

ESPUMA BLANCA

POSITIVA

SOLUCION DE OVOALBUMINA EN PRESENCIA DE CALOR SOLUCION DE OVOALBUMINA EN AGITACION

 REACCIONES

POSITIVA POSITIVA



REACCIÓN DE OVOALBUMINA, CARME Y COLAPIZ CON BIURET



REACCIÓN XANTOPROTEICA DE OVOALBUMINA Y CARNE CON ACIDOS INORGANICOS (HNO3)



SOLUCION DE OVOALBUMINA CON ACIDO ORGANICOS (Ácido Tricloro acético)

Ácido tricloroacetico



Modifica el punto isoeléctrico de la proteína.



SOLUCION DE OVOALBUMINA CON PRESENCIA DE CALOR Y AGITACIÓN

 CONCLUSIÓN  Se evidenció el carácter proteico de la ovoalbúmina, carne y colpaiz ya que en la reacción de Biuret solo reaccionan proteínas y péptidos, y no aminoácidos.  La reacción de reactivo de Biuret hace que cambie de color la solución indicando que poseía 2 grupos carbamino unidos directamente o a través de un solo átomo de carbono o nitrógeno formando un complejo de coordinación entre los iones Cu2+ y los pares de electrones no compartidos del nitrógeno que forma parte de los enlaces peptídicos provocando el cambio de coloración violeta.  El HNO3 hace que la solución de ovoalbúmina se separa y toma una coloración amarillenta esto se da a la formación de un compuesto aromático nitrado de color amarillo, presencia de proteínas es una reacción xantorpoteica.  Por la desnaturalización de la carne se da particularmente la mioglobina que contiene hierro, al destruirse la proteína y dejar solo el hierro este le da la coloración amarilenta.  Al colocar ácido tricloroacético en la solución el pH del medio cambia provocando en la proteína, cambios en el patrón de ionización de los grupos carboxilo y amino en las cadenas laterales de los aminoácidos, provocando una desorganización y una inestabilidad en las atracciones o repulsiones iónicas, que contribuyen a la formación de una estructura terciaria normal.  La mayoría de las proteínas pierden su función biológica cuando son sometidas cambios como Ph, temperatura y estrés están se forman en

una proteína desnaturalizadas. Es decir la desnaturalización es irreversible.

 REFERENCIA BIBLIOGRAFIA   

https://temasdebioquimica.wordpress.com/tag/estructura-de-proteinas/ https://www.uv.es/tunon/pdf_doc/proteinas_09.pdf http://www.aibarra.org/Apuntes/Biofisica_Bioquimica/Bioquimica.pdf

PRACTICA N°8 “CROMATOGRAFIA DE FIDROLIZADOS PROTEICOS”

 PARTE EXPERIMENTAL   Preparación de muestra

Sembrado de muestra

Pesar 1g de la muestra, en esta o portunidad fue MACA

Muestra con H2O y HCl 6 M

Fase móvil

1ºFiltración de la muestra

Placas con el sembrado en reposo

Calentar agregando 2ºFiltración de la Preparación de placas carbón activado muestra

Fase recorrida

Muestras estándar

 REACCION QUIMICA: (revelador – NIHIDRINA)

O

O O

Si O

Si

O

O

silica gel

OH

RESULTADOS

 CÁLCULOS

a= altura de la mancha en el cromatograma (se mide desde la línea de partida hasta el centro de la mancha.

b= altura alcanzada por la fase móvil desde la línea de partida METIONINA 𝑨

Rf: Rf:

𝑩 𝟐

= 0.30cm

𝟐.𝟕𝟑

 ALANINA Rf=

𝟐.𝟒 𝟕.𝟑

= 0.32cm

 Muestra Maca Rf=

𝟐.𝟐 𝟕.𝟑

= 0.30cm

 CONCLUSIONES 

El factor de retención depende de la afinidad de los aminoácidos con el disolvente utilizado y esto mismo depende del tipo de aminoácido que se utilice, es decir si son polares, apolares, neutros, etc.



La cromatografía de capa fina (TLC) es una técnica eficiente a la hora de separar aminoácidos. Los aminoácidos incoloros pueden ser separados e identificados por medio de esta técnica, mediante el uso de un revelador (Ninhidrina) que los transforma en manchas coloreadas sobre la capa; pero hay que tener en cuenta que para esta práctica no contamos con los implementos mínimos de laboratorio como para encontrar los resultados deseados.



Es imposible demostrar las mediciones del recorrido de las siembras, esto debido a que no son muy claras las manchas en la placa. Solo en algunas de ellas se puede observar claramente, en las demás es muy ambiguo el resultado.

 REFERENCIA BIBLIOGRAFÍA 

Fessenden, R. “Química Orgánica” 2006 Editorial Iberoamericana. México



McMurry, J. “Química Orgánica” 2009, 7ª ed. Ed.Thomson Paraninfo. México,



Solomons, T (1998). “Química Orgánica”. México: Editorial Limusa



Streitwieser, A (1999). “Química Orgánica”. España: Editorial Mc Graw Hill (tercera edición)



Voet, J. “Bioquímica”. 2006, Editorial Medica Panamericana, España



Vollhardt, K. Peter C.. “Química orgánica: estructura y función” 2007, 5ª ed. Ed. Omega, Barcelona



Wade, L G “Química Orgánica” 2004 Editorial Pearson/ Prentice Hill, 5ª ed. Madrid

PRACTICA N° 9 LÍPIDOS  MISCIBILIDAD DE LOS LIPIDOS: Agregar solventes orgánicos apolares:     

Propanol + 𝑯𝟐 𝑶 Etanol + 𝑯𝟐 𝑶 Éter de petróleo + 𝑯𝟐 𝑶 Cloroformo + 𝑯𝟐 𝑶 𝑯𝟐 𝑶 polar

ACEITE

 RESULTADOS DE ENSAYOS DE SOLUBILIDAD SOLUCIÓN Aceite + agua

CARACTERISTICA

Resultado Inmiscible

Aceite + etanol

inmiscible

Aceite +cloroformo

miscible

Aceite + eter

miscible

 RESULTADO DE TINCIÓN:

SUDAN III

AZUL DE METILENO

FORMACIÓN DE PRECIPITADO ROJO COLOREA AL ACEITE

FORMACIÓN DE DOS FASE SIN COLOREAR EL LIPIDO

 RESULTADO DE COMPORTAMIENTO DEL JABON SOLUCIÓN CARACTERISTICAS RESULTADO Jabon+ BaCl2 Pp blanco

Jabon + CaCl2

Pp blanco transparente

Jabon + FeCl3

Pp color ladrillo

 REACCIÓN DEL AZUL DEL METILENO: Colorante hidrófilo que tiñe fácilmente el agua, pero atraviesa los lípidos sin colorearlos.

 REACCIÓN DE SAPONIFICACIÒN CH2 O CO R 1 CH O CO R 2

CH2OH + 3NaOH

CHOH

CH2 O CO R 3

CH2OH

Triglicérido

Glicerina

R1COO-Na +

R2COO-Na R3COO-Na Sales sódicas de ac. grasos (JABÓN)

 REACCIÓN DEL JABON

CH3(CH2)14COO- Na+ +

BaCl2

CH3(CH2)14COO- Na+ + FeCl3

(CH3(CH2)14COO-)2 Ba

+ NaCl

(CH3(CH2)14COO-)2 Mg + NaCl

 CONCLUCIONES: 







Los lípidos son insolubles en agua. Cuando se agitan fuertemente en ella se dividen en pequeñísimas gotas formando una emulsión de aspecto lechoso, que es transitoria, pues desaparece en reposo por reagrupación de gotitas de grasa en una capa que, por su menor densidad, se sitúa sobre el agua. Los disolventes apolares( cloroformo, eter) son capaces de disolver sustancias no hidrosolubles ( grasas) y que por suspropiedades tienen multiples aplicaciones tecnologicas, industriales, etc. Por lo contrario el agua es un disolvente polar es por ello que no disuleve la grasa. El aceite se teñirá con el Sudán con un rojo-anaranjado, debido a que este es un colorante lipófilo; es decir, tiene afinidad con los ácidos grasos, mientras el azul de metilico es hidrofilico por ello no colore el aceite. el jabon en soluciòn al ser mesclado con sales de calcio,bario hierro. Hace que se forme el agua dura y como consecuencia el jabon no forma espuma .Forma un residuo grisáceo con el jabón, que a veces altera el color de la ropa sin poder lavarla correctamente, forma una dura costra en las ollas y en los grifos y, algunas veces, tienen un sabor desagradable. El agua dura contiene iones que forman precipitados con el jabón o por ebullición.

 REFERENCIA BIBLIOGRAFICA    

http://dea.unsj.edu.ar/quimica2/laboratorio%20de%20lipidos.pdf http://www.academia.edu/6684953/Laboratorio_lipidos https://sites.google.com/site/equipoquimicaexperimental6/practica-17pruebas-generales-para-lípidos http://es.pdfcoke.com/doc/16937753/Informe-N%C2%BA8-laboratorio-debioquimicaI#pdfcoke

PRACTICA N° 10

“ACEITES ESENCIALES”  RESULTADOS:

Se frota con aceite Se le provoca un estrés esencial como la cascara al globo, INFLANDOLO. de la naranja. SE REVIENTA.

POSITIVO Se frota con aceite Se le provoca un estrés esencial de orquídeas. al CD, doblándolo un SE ROMPE EL CD. poco.

POSITIVO  CONCLUSIONES:  







El aceite esencial del limón y naranja contiene más del 90 % de d– limoneno, componente mayoritario en su composición normal. Todos los aceites esenciales de las frutas cítricas (mandarina, naranja o limón), en su cascara contienen terpenos (derivados del isopreno) entre otras sustancias, que son buenos disolventes. La mayor parte de globos están hechos de goma, que es un material basado también en hidrocarburos y apolar. Los compuestos apolares se consideran disolventes orgánicos entre ellos. Al entrar en contacto con el globo, el limoneno sencillamente la disuelve, debilitando la pared del globo y provocando que explote. Los CDS están hechos de policarbonato que suele obtenerse por reacción de un bisfenol con fosgeno: Las aminas atacan químicamente a los policarbonatos mientras que los esteres, cetonas, hidrocarburos aromáticos e hidrocarburos halogenados, los disuelven total o parcialmente lo que explica que les causen rotura cuando están sometidos a estrés. La extracción por arrastre de vapor es uno de los principales procesos utilizados para la extracción de aceites esenciales.  Las esencias hallan aplicación en numerosísimas industrias, algunos ejemplos son los siguientes: Industria cosmética y farmacéutica: como

perfumes, conservantes, saborizantes, principios activos, etc. Industria alimenticia y derivada: como saborizantes para todo tipo de bebidas, helados, galletas, golosinas, etc.

 REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS:   

es.gizmodo.com/el-poder-del-limoneno-o-por-que-la-piel-de-naranjaexp. www.recercaenaccio.cat/wpcontent/uploads/2015/07/QuimRecreatCa st. www.quieroapuntes.com ›... › Química › Experimentación en Síntesis Química.

PRACTICA N° 10

“FLAVONOIDES”  RESULTADOS SOLUCIÓN Cascara de maiz morado + Mg +HCl

CARACTERISTICAS Coloración rosada

RESULTADO Positiva

Coronta de maíz morado + Mg° + HCl

Coloración rojo vino

Positiva

Berenjena + Mg° + HCl

Coloración amarillenta oscura

Positiva

Cascara de Uvas + Mg° + HCl

Coloración rojo pardo

Positiva

Betarraga + Mg° + HCl

coloración rojo negruzco

Positiva

 REACCIONES

OH OH

OR OR

 CONCLUSIONES 

 

 

Los alimentos mostrados en presencia de un metal alcalino y un ácido su reacción será positiva ya que esta reacción identifica flavonoides mostrando una coloración rojiza. El hidrogeno generado produce por reducción el ión flavilio es lo que le da el color rojo escarlata y parecidos. En la berenjena el color varía a un amarillo mostaza y no un rojo el cual esperábamos, esto se debe que contienes Isoflavonas un derivado de los flavonoides. Todos los flavonoides excepto las chalconas, auronas e isoflavonas dan positiva esta reacción de Shinoda Las agliconas flavonoides altamente hidroxiladas son solubles en alcohol

 REFERENCIA BIBLIOGRAFICA  http://www.dole.cl/index.php/instituto-de-nutricion/super-food/122instituto-de-nutricion/superfood/b/140-betarraga  http://nutricion.ferato.com/index.php/Beterraga