Informe-de-lab.-1.docx

ESCUELA SUPERIOR POLITÉCNICA DE CHIMBORAZO FACULTAD DE CIENCIAS CARRERA DE INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA AMBIENTAL

INFORME DE PRÁCTICA DE LABORATORIO N° 2 TEMA: EXAMEN MICROBIOLOGICO DE SUPERFICIES Y AIRE INTRAMURAL

NOMBRES:

CÓDIGOS:

Guaminga Israel

2824

Lombeida Bryan

2765

Pilco Laura

2892

Terán Solange

2918

Vivas Melanie

2818

CURSO: Quinto A FECHA: Viernes 16 de Noviembre del 2018

1

1. INTRODUCCIÓN

La atmósfera no tiene una microbiota autóctona pero es un medio para la dispersión de muchos tipos de microorganismos procedentes de otros ambientes, los microorganismos pueden ser transportados rápidamente, en forma de bioaerosoles, a través de grandes distancias con el movimiento del aire que representa el mejor camino de dispersión.

El aire contiene en suspensión diferentes tipos de microorganismos, especialmente bacterias y hongos. La presencia de uno u otro tipo depende del origen, de la dirección e intensidad de las corrientes de aire y de la supervivencia del microorganismo. Algunos microorganismos se encuentran en forma de células vegetativas, pero lo más frecuente son las formas esporuladas, ya que las esporas son metabólicamente menos activas y sobreviven mejor en la atmósfera porque soportan la desecación.

2. OBJETIVOS 2.1 OBJETIVO GENERAL. 

Realizar exámenes microbiológicos de superficies y aire intramural en espacios determinados.

2.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS. 

Aplicar las técnicas adecuadas para determinar la presencia microorganismos en el aire



Analizar las características de los microorganismos encontrados en el muestreo.



Determinar el número de colonias visibles que contiene una muestra de aire.

2

3. MARCO TEÓRICO.

3

4. MATERIALES, REACTIVOS Y EQUIPOS. MATERIALES: 

Plantillas de aluminio con diámetro de 9 cm.



4 Tubos con tapa rosca con agua de peptona.



Hisopos de algodón



8 Cajas petri

EQUIPOS: 

Balanza



Incubadora

MEDIOS DE CULTIVO: 

Agar McConkey



Agar PCA



Agar Saboraud



Agar TSA



Agua peptona o Solución salina

4. PROCEDIMIENTO. 

El hisopo estéril remojar en la solución, presionar contra las paredes interiores para remover el exceso.



Colocar la plantilla en la superficie a muestrear, frotar la superficie con el hisopo húmedo, rotándolo y haciendo trazos en sentido horizontal, vertical y diagonal, sumergir el hisopo contaminado en el tubo con la solución, descartar el exceso.



Sembrar con el hisopo en las cajas Petri con los medios seleccionados.



Incubar a 35°C durante 48 horas.



Contar las colonias y reportar el número de colonias por área del círculo.



Con las cajas restantes, en lugares estratégicos, abrir y dejar sedimentar por períodos de 15, 30 min.



Incubar a 35°C durante 48 horas. 4



Para conocer la cantidad de microorganismos por m3 se realiza el siguiente cálculo 𝑼𝑭𝑪 𝑎 𝑥 5𝑥 104 = 𝒎𝟑 𝜋𝑟 2 𝑡

Donde: 

a: número de colonias contadas en la caja petri



r2: superficie del área en cm2



t: tiempo de exposición en minutos

5. RESULTADOS

Calculo de colonias en mesón:

Resultados en las muestras del aire:

Agar McConkey

𝑼𝑭𝑪 𝒎𝟑

=

0 𝑥 5𝑥 104 𝜋1002

=0

Agar McConkey = 3 Colonias

𝑼𝑭𝑪 𝒎𝟑

=

Agar PCA

𝑼𝑭𝑪 𝒎𝟑

=

11 𝑥 5𝑥 104 𝜋1002

𝒎𝟑

=

9 𝑥 5𝑥 104 𝜋1002

= 54.983

𝒎𝟑

𝒎𝟑

=

2 𝑥 5𝑥 104 𝜋1002

= 2.39 ∗ 103

𝑼𝑭𝑪 𝒎𝟑

=

172 𝑥 5𝑥 104 𝜋20

= 1.37 ∗ 105

𝑈𝐹𝐶 𝑚3

Agar TSA = 39 Colonias

= 44.986

𝑼𝑭𝑪 𝒎𝟑

Agar Saboraud

𝑼𝑭𝑪

𝜋20

Agar PCA = 172 Colonias

𝑼𝑭𝑪

Agar TSA

𝑼𝑭𝑪

3 𝑥 5𝑥 104

= 9.997

=

39 𝑥 5𝑥 104 𝜋20

= 3.1 104

𝑼𝑭𝑪 𝒎𝟑

Agar Saboraud = 10 colonias

𝑼𝑭𝑪 𝒎𝟑

=

10 𝑥 5𝑥 104 𝜋20

= 7.96 ∗ 103

𝑼𝑭𝑪 𝒎𝟑

5

6. CONCLUSIONES.

7. RECOMENDACIONES.

6

8. ANEXOS.

7