Citometría de flujo Múltiples características físicas de cada sola célula en forma simultanea. Estas características de las células son evaluadas debido a que las células pasan de forma individual por un sistema de fluido que permite un flujo de 500 a 4,000 células por segundo.
Muestra Fluido
Cámara de fluido
Rayo de Luz
Lentes
QUE NOS PUEDE DECIR LA CITOMETRIA DE FLUJO DE CADA CELULA?
Su tamaño relativo. (Forward scatter-FSC) Su granularidad o su complejidad citoplasmática. (Side scatter-SSC) Su intensidad de fluorescencia relativa. (FL1, FL2, FL3 o FL4)
COMO DETECTA EL CITOMETRO ESTAS CARACTERISTICAS SOBRE LA CELULA? El citómetro de flujo detecta la interacción entre una célula y un rayo láser. La forma que la célula: Desvía la luz incidente. Emite fluorescencia.
Dispersión lateral (SSC)
LASER
Dispersión frontal (FSC)
El como la célula desvía los rayo de luz nos da información acerca del tamaño y la granularidad de cada célula.
PRINCIPIOS DE LA CITOMETRIA DE FLUJO Dispersion Amplificador
Lentes Lateral
Laser
Flujo
Frontal
Muestra
¿Qué es un fluorocromo? 488 nm
HO
O
530 nm
CO2H
Luz Incidente
Molécula de
Luz Fluorescente Emitida
Fluoresceína
• El fluorocromo absorbe la luz del láser • El fluorocromo emite un rayo luminoso de diferente longitud de onda
Fluorescencia Intensidad de Fluorescencia Emitida FITC
FITC
=
Sitios de Unión
FITC FITC
Número de Eventos
FITC FITC
FITC FITC FITC
Intensidad Fluorescente
FITC
TABLA DE PRINCIPALES FLUOROCROMOS UTILIZADOS EN CITOMETRÍA DE FLUJO
Fluorocromos 7-amino Actinomycin D Aloficocianina DAPI Fluoresceína Ficoeritrina Hidroxicumarina Hoechst 33342 Mitramicina Naranja de Acridina Peridinina Clorofila Rojo Texas Yoduro de Propidio X-Rodamina
Aplicación 7-AAD ADN, viabilidad APC IF proteínas ADN FITC IF proteínas PE IF proteínas IF proteínas ADN ADN AND/ARN PerCP IF proteínas IF proteínas PI ADN, viabilidad XRITC Mitocondría
Excitación Emisión (nm) (nm) 546 650 345 495 480 ; 565 325 343 445 503 490 589 536 495
647 660 455 519 578 386 483 575 530/640 675 615 617 519
Optica – Fluorescencia FL1 530/30 SSC
FL2
488/10
585/42
670LP
FL3
488 nm Laser azul
.
Cámara De flujo
FSC 488/10
Finalmente la señal análoga de voltaje es pasada a una señal digital numérica que se expresa en “Canales”
Señal digital
Fotones
Resolución 0 – 256 0 –1024
List-Mode FSC
SSC
FL1
FL2
Event 1
30
60
638
840
Event 2
100
160
245
85
Event 3
300
650
160
720
PRESENTACION DE LOS DATOS • Gráficas: Histograma y de distribución en dos dimensiones. • Tablas de números • Valores relativos y absolutos (perlas)
Número de Células
Histograma
0
500
1000
Incremento en intensidad
490
500 Voltios transformados a “Canales de intensidad”
510
IgM (-)
IgM (+)
Negativas Low
Intemediate
M2
High
M1
M1
FSC SSC Eje y
FL-4
FL-3
eje x
FL-2
FL-1
Como se ubican espacialmente las poblaciones de leucocitos de sangre periférica?
Complejidad interna SSC
Gráfica de puntos
G
G
M L
M L L
G
M
Tamaño relativo FSC
Granulocitos
Detritos
Monocitos
Linfocitos
R1
R1 30%
MARCAJE CON 1 SOLO FLUOROCROMO Se quiere saber cuantas células CD3+ hay en sangre periférica. Anticuerpo anti-CD3 marcado con fluoresceína FITC 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7.
Muestra de sangre periférica. Mezcla de la muestra con el anti-CD3 FITC. FITC Incubar en oscuridad. Lisar los glóbulos rojos. Lavar con solución tampón. Fijar con paraformaldehido. Leer en el citómetro de flujo.
Control de isotipo
Anti-CD3 FITC
Región 1
Tamaño relativo FSC
Fluorescencia naranja (FL2)
Complejidad interna SSC
Control de isotipo
Gráfica de puntos
Fluorescencia verde (FL1) Anti-CD3 FITC
Gráfica de puntos Fluorescencia naranja (FL2)
Anti-CD3 FITC
UL
UR
LL
LR
Fluorescencia verde (FL1) Anti-CD3 FITC
Células marcadas
UL 0% UR 0% LL 10% CD3LR 90% CD3+
UL
LL
UR
LR
CD3+ 79.97% de R1
Gate: G1
CD3+ 14.14% Población celular total
Quad Events % Gated % Total UL 0 0.00 0.00 UR 0 0.00 0.00 LL 931 20.03 3.54 LR 3716 79.97 14.14
MARCAJE CON 2 FLUOROCROMOS
Se quiere saber cuantas células CD3+ y CD19+ hay hay en sangre de un individuo. Anticuerpo anti-CD3 marcado con fluoresceína FITC Anticuerpo anti-CD19 marcado con ficoeritrina PE
Gráfica de puntos
Complejidad interna SSC
Anti-CD3 FITC Anti-CD19 PE
Región 1
Tamaño relativo FSC Células marcadas
Anti-CD3 FITC Anti-CD19 PE
Células marcadas
Fluorescencia naranja (FL2) Anti-CD19 PE
Gráfica de puntos UL
UR
LL
LR
Fluorescencia verde (FL1) Anti-CD3 FITC CD3- CD19+
UL 14% UR 0% CD3+ CD19+ LL 10% CD3- CD19LR 76% CD3+ CD19-
CD3+ 72.75% R1 12.10% Total
Gate: G1
CD19+ 16.30% R1 2.71% Total
Quad Events % Gated % Total UL 696 16.30 2.71 UR 7 0.16 0.03 LL 461 10.79 1.80 LR 3107 72.75 12.10
MARCAJE CON 3 FLUOROCROMOS
Se quiere saber cuantas células T CD3+/CD4+/CD8+ hay hay en sangre de un individuo. Anticuerpo anti-CD3 marcado con fluoresceína FITC Anticuerpo anti-CD4 marcado con ficoeritrina PE Anticuerpo anti-CD8 marcado con Peridinina clorofila PerCP
Anti-CD3 FITC Anti-CD4 PE
Gráfica de puntos
CD3+ CD3+ CD8+
Complejidad interna SSC
Anti-CD8 PrCP
Región 1
CD3+ CD4+
CD3- CD4- CD8-
Tamaño relativo FSC
Anti-CD3 FITC Anti-CD4 PE Anti-CD8 PrCP
UL 5% CD3UR 60% CD3+ LL 10% CD3LR 25% CD3+
CD4+ CD4+ CD4CD4-
Fluorescencia naranja (FL2) Anti-CD4 PE
Gráfica de puntos UL
UR
LL
LR
Fluorescencia verde (FL1) Anti-CD3 FITC
Anti-CD3 FITC Anti-CD4 PE Anti-CD8 PrCP
UL 5% CD3UR 25% CD3+ LL 10% CD3LR 60% CD3+
Fluorescencia naranja (FL3) Anti-CD8 PerCP
Gráfica de puntos
CD8+ CD8+ CD8CD8-
UL
UR
LL
LR
Fluorescencia verde (FL1) Anti-CD3 FITC
Anti-CD3 FITC Anti-CD4 PE Anti-CD8 PrCP
Fluorescencia naranja (FL3) Anti-CD4 PE
Gráfica de puntos
UL 65% CD4+ CD8UR 0% CD4+ CD8+ LL 10% CD4- CD8LR 25% CD4- CD8+
UL
UR
LL
LR
Fluorescencia verde (FL3) Anti-CD8 PrCP
PrCP
R1
Complejidad interna SSC
Complejidad interna SSC
UL
Región 1
Tamaño relativo FSC
UR
Región 2 LL
LR
Fluorescencia verde (FL3) Anti-CD3 FITC UL 0% UR 0% LL 25% CD3LR 75% CD3+
R1
R2
File: Leydi Vasquez.001
Gate: G1
Quad Events % Gated % Total UL 0 0.00 0.00 UR 0 0.00 0.00 LL 592 25.25 9.05 LR 1753 74.75 26.79
GRAFICAS Determinar la proporción relativa de una característica para una población celular, con respecto a la población total.
Ubicación en la gráfica
CD10 CD34 CD8 HLA-DR TIMOCITO CD1 CD8 CD2 CD71 CD3 CD38 CD4 TCR
LINFOCITO PRE B CD10 CD19 CD34 CD38
LINFOCITO B CD19 CD20 CD22 IgM
LINFOCITO T COOPERADOR CD4 CD28 CD5
CD3 TCR
LINFOCITO T CITOTOXICO CD8 CD3 CD28 CD5
NK MADURO CD2 CD8+/CD16 CD56 CD57
Leucocitos Linfocitos Células CD3+ Células CD4+ Células CD8+
5800/µl 30% 70% de los linfocitos 30% 65%
Cual es el valor absoluto de cada subpoblación en los linfocitos y cual es el significado clínico del resultado.
Aplicaciones de la Citometría de Flujo en investigación
Células dendríticas derivadas de monocitos
Monocitos CD14+
DC inmadura
CD83-
CD14-
CD83-
DC madura CD14-
CD83+
IL-4 GM-CSF
CD14 CD86
HLA-DR CD83
Estímulo de maduración y/o antígeno de pulga
CBA
CD derivadas de monocitos A A.
R1
CD14
CD86
96.5%
B 99.5%
0.5%
B.
HLA-DR
CD83
Subpoblaciones de CD
R1
R2
CDm Lin- HLA-DRalto CD11c+ CD123int R3 CDp Lin- HLA-DRalto CD11c- CD123alto R4
R5
Detección intracelular de citocinas CMSP
Marcaje Citometría
NE SEB
P
αCD28/αCD49d
12 h BFA x 9 h
Selección de la población de LT CD4+
Células T efectoras secretoras de IL17
0.017
No estimulado
0.000
0.096
SEB
0.064
Pulga 20 µg/ml
0.211
0.585
Células T reguladoras secretoras de IL-10
0.020
No estimulado
0.000
0.492
SEB
0.212
Pulga 20 µg/ml
1.178
0.613
IL-2
IL-13
Evaluación de células T multifuncionales
IL-10
IL-10
Análisis: Esquema de jerarquías LT CD4+
Seder RA. Nat Rev Immunol 2008
Perfil de LT multifuncionales en pacientes con diferentes estadíos de enfermedad. Ej HIV
El perfil multifuncional de los LT varía de acuerdo con el estadio de la enfermedad
Betts MR. Blood 2006
Replicación viral
La multifuncionalidad se asocia con menor carga viral Virus Vaccinia
CMV
HIV-2
HIV-1 (LTNP)
HIV-1 Progresores
Número de funciones
Carga antigénica y duración
Seder RA. NRI 2008
Células T reguladoras naturales
MIF perlas en FL3
Cuantificación de citocinas en fluidos 6 perlas con diferente MIF en FL3 Cada perla con acp de captura para una citocina diferente.
Adición de la muestra O el standard (citocina)
IL-12 TNFα IL-10 IL-6 IL-1β IL-8
Revela la reacción con un conjugado anti citocina MIF en FL2