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  • Pages: 14
INFORME MENSUAL Nº 09- 2016

A

: C.D. Ana Esmeralda Villacorta Salas Directora de la Escuela Académico Profesional de Tecnología Médica

DE

: Alvarez Cardenas Treisy Interno del Hospital Nacional Ramiro Prialé Prialé - Essalud

CODIGO

: 2011164055

SEDE

: HOSPITAL NACIONAL RAMIRO PRIALE PRIALE -ESSALUD

ASUNTO

: INFORME DEL MES DE DICIEMBRE

TUTOR

: Lic. T.M. Montes Hijar, Efrain

I.

DESCRIPCIÓN DE LO DESARROLLADO EN EL ÁREA DE ROTACIÓN En el laboratorio de microbiología está orientada esencialmente al diagnóstico microbiológico de las enfermedades infecciosas. Una parte importante de esa actividad consiste en el aislamiento, la identificación de microorganismos (bacterias, hongos) y la determinación de la sensibilidad a los antimicrobianos de los microorganismos causales de estas enfermedades. El laboratorio de microbiología en el hospital nacional Ramiro Priale Priale está ubicado en el laboratorio central, el área de microbiología se divide en dos partes microbiología básica y microbiología especial.

[Fecha] UAP

1

El área de Microbiología se encuentra ubicada en el laboratorio central del Hospital Ramiro Prialé Prialé, dividiéndose en dos áreas: Microbiología Básica y Microbiología Especial. Siendo el mes de enero la rotación en el área de microbiología especial.

. Esta área cuenta equipo de identificación

y antibiograma: VITEK 2-

COMPAC de BIOMERIÉUX, con un autoclave, una incubadora y una refrigeradora.

Sistema VITEK: Consta de un módulo de vacío-sellador, un incubadoralector, un computador, el monitor y la impresora. Permite identificar bacterias hasta en 3 horas. Se utilizan sustratos liofilizados y se requiere de un inóculo estandarizado, y es en los módulos del equipo donde se realiza el llenado y sellado de las tarjetas, la incubación y la lectura. El software proporcionado con el computador es el que analiza las lecturas en cada una de las tarjetas comparándolas con una base de datos, generando de esta forma el resultado de acuerdo con el teorema de Bayes.

Estas muestras son sembradas en diferentes medios para luego ser incubadas durante 24 horas y los de hospitalización 48 horas. Para luego ser validadas y reportadas, las muestras positivas ingresan al equipo VITEK 2-COMPAC

para su respectiva identificación y antibiograma del

microorganismo.

En esta área también se realiza la toma de muestra para los diferentes cultivos que se soliciten en Microbiología Especial como cultivo de secreción faríngea, secreción vaginal, cultivo de hongos, hemocultivos, cultivo de líquidos, cultivo de aspirados o lavados, etc.

[Fecha] UAP

2

II. ASISTENCIA DE INTERNADO Asistí al hospital todo el mes de Enero de forma regular del 01 al 31 del presente mes con un horario de ingreso de 6:50 a.m. a 1:00 p.m. de lunes a sábado y el turno tarde de 12:30 p.m. a 7:00 p.m.

SEPTIEMBRE – 2016 Domingo Lunes

Martes

Miércoles

Jueves

Viernes

Sábado

1

 2

 3

4

 5

 6

 7

 8

 9

 10

11

 12

 13

 14

 15

 16

 17

18

 19

 20

21

 22

 23

 24

25

 26

 27

 28

√ 29

√ 30

AREA HOSPITALARIA

III.

 Números De Atenciones / Muestras en el servicio diario se atienden un promedio

de 20 secreciones

consultorio externo, paciente de policlínicos pacientes referidos de otras ciudades y pacientes hospitalizados de todos los servicios del hospital como UCI, neonatología, medicina, cirugía general, pediatría, obstetricia, psiquiatría.  Estadísticas

De

La

Atención,

Discriminado

Por

Sexo

/

Patología/Diagnostico  El porcentaje de atenciones tanto en urocultivos como coprocultivos al mes es muy variable ya que la cantidad de pacientes por día también varía.

[Fecha] UAP

3

Cultivo Ventas

SECRECION VAGINAL,144

SECRECION VAGINAL

CULTIVO HONGO

CULTIVO HONGO, 72

SECRECION FARINGEA, 216

SECRECION FARINGEA

0 Ventas

50

SECRECION FARINGEA 216

100 CULTIVO HONGO 72

150

200

250

SECRECION VAGINAL 120

Cuadro estadistico de clasificación de los diferentes cultivos de secreciones mas frecuentes en el area .

) 60%

60%

50% 40% 30%

20%

20%

20%

10% 0% CONSULTORIO

Ventas

CONSULTORIO 60%

HOSPITALIZACIÓN HOSPITALIZACIÓN 20%

REFERIDOS REFERIDOS 20%

Ventas

Cuadro estadistico de discriminacion de servicios del hsoptital que solicitron

IV.

DESCRIPCIÓN DE PROCEDIMIENTO Y TÉCNICAS REALIZADAS EN EL ÁREA DE ROTACIÓN

[Fecha] UAP

4

DONANTE Entiéndese por donante la persona que previo cumplimiento de los requisitos señalados por la ley, da sin retribución económica y a título gratuito y para fines preventivos, terapéuticos, de diagnóstico o de investigación, una porción de su sangre en forma voluntaria, libre y consciente. 3.2 REQUISITOS PARA SER DONANTE. 3.2.1 PARA PROTEGER AL DONANTE ESTADO DE SALUD: El donante debe comunicar siempre que se encuentra en buen estado de salud. EDAD: Ser mayor de 18 años y menor de 65 años PESO: Tener un peso mínimo de 50 Kilogramos PULSO: Entre 50 a 100 pulsaciones por minuto en forma regular; en atletas se aceptan hasta 40 pulsaciones por minuto como mínimo. PRESION ARTERIAL: No debe tener presión sistólica mayor a 180 mm de Hg ni menor de 90 mm de Hg. No debe tener presión diastólica mayor a 100 mm. de Hg ni menor de 60 mm de Hg. HEMATOCRITO O HEMOGLOBINA: Preferible el hematocrito por su exactitud y facilidad de procedimiento. VALORES DE HEMATOCRITO: Entre 40 a 54 % para hombres y entre 38 a 47 % para mujeres VALORES DE HEMOGLOBINA: Entre 13.5 g/dl hasta 18 g/dl para hombres: entre 12.5 g/dl hasta 16 g/dl para mujeres. EMBARAZO: No se acepta como donante la mujer que presente cualquier signo o síntoma de embarazo; terminado éste, luego de 6 meses y hasta 1 año si está lactando. MENSTRUACIÓN: Se difiere por 24 horas a la donante cuando presenta cólico menstrual; en caso de sangrado profuso se acepta luego de 24 horas de que éste haya cesado. FRECUENCIA DE LA DONANCION: Hombres y mujeres no deben ser donantes nuevamente antes de 4 meses. ANTECEDENTES DE TRANSFUSIÓN: No puede donar quien ha recibido transfusión de sangre o alguno de sus componentes el último año. EDUCACION DEL DONANTE A todos los posibles donantes de sangre, aféresis y médula ósea debe suministrárseles antes de la donación material educativo sobre: Enfermedades transmitidas por transfusiones que debe incluir sintomas y signos de SIDA Ofrecer oportunidad para preguntar sobre este material Dejar constancia firmada que han leído y entendido el material suministrado. Ser informados sobre la autoexclusión 3.5 CRITERIOS DE AUTOEXCLUSION PARA DONANTES DE SANGRE: Antecedentes de violación sexual, anal u oral Relaciones homosexuales, bisexuales promiscuas, casuales o con personas diferentes a su pareja y sin protección (Sin condón) Drogadicción Enfermedades venéreas con o sin tratamiento en el último año cronológico. Presencia de uno o más de los siguientes síntomas, sugestivos de SIDA: fiebre, diarrea, astenias mayores de un mes, odinofagia, sudoración profusa nocturna, pérdida de peso inexplicable de 10 kilogramos o más en los dos últimos meses, tos persistente o disnea de

mediano

esfuerzo.

Compañeros

(as)

sexuales

de

pacientes

politransfundidos

(Hemofílicosrenales crónicos y otros) 3.6 CONSENTIMIENTO PARA LA DONACION Antes de

[Fecha] UAP

5

efectuar la flebotomía, al donante debe explicarse en términos que éste pueda entender: En que consiste el procedimiento Los riesgos que puede con llevar. Las pruebas que se efectúan para reducir las posibilidades de transmisión. El donante debe tener la oportunidad de preguntar sobre el procedimiento y rechazarlo si es el caso. Si lo acepta, firmar y añadir el número de la cédula de ciudadanía. PREPARACION DEL SITIO PARA LA VENOPUNCION  Colóquese los guantes e inicie el procedimiento. Limpie vigorosamente con una solución de jabón quirúrgico en una área de 4 cm. de diámetro; realice movimientos circulares, comenzando por el centro y siguiendo por los extremos, teniendo cuidado que el algodón no pase dos veces por el mismo sitio.  Repita el procedimiento anterior utilizando una solución de yodo o de alcohol antiséptico. Espere mínimo treinta segundos antes de hacer la punción: para dejar secar.  La preparación del sitio de la punción es de gran responsabilidad del flebotomista. Quien debe cumplir todas las normas de asepsia, como si se tratara de una cirugía menor.  Si el sitio se contamina por alguna razón todo el procedimiento debe repetirse nuevamente. Advierta al donante no tocar la zona después de iniciar la desinfección.  No palpe la vena con los dedos, después de limpiarla; esto es una fuente de contaminación PREPARACION DE LA BOLSA PARA RECOLECCIÓN Inspeccione la bolsa buscando goteo de anticoagulante, contaminación de las agujas o algún otro defecto; esto debe hacerse después de la limpieza de la zona. Dando tiempo para dejar secar el área desinfectada Todas las bolsas de recolección deben tener registro sanitario expedido por El INVIMA Deben ser seguidas las recomendaciones del fabricante referidas al tiempo permitido para utilizar las bolsas, una vez el contenedor que las almacena ha sido abierto. REALICE LA VENOPUNCION Cuelgue la bolsa principal en la pesa teniendo cuidado que ninguna parte del equipo toque el piso, incluyendo la bolsa satélite. Si alguna parte del equipo toca el piso ésta debe limpiarse con alcohol. A excepción de la aguja ( en este caso se descarta la bolsa y se utiliza una nueva) Coloque una pinza hemostática en el tubo piloto, para evitar la entrada de aire en el sistema así como el paso de anticoagulante de la bolsa al donante.

[Fecha] UAP

6

Colóquese los guantes, chequee rápidamente la aguja para detectar en el bisel cualquier defecto, luego proceda a realizar la punción. Retire la pinza una vez que se coja la vena. Para prevenir pérdida del factor VIII y para recolectar un buen número de plaquetas, la venopunción debe hacerse con un mínimo trauma en los tejidos. Inmovilice la aguja con esparadrapo una vez la sangre esté fluyendo libremente. Anote el tiempo en que se comenzó la venopunción y si ésta fue difícil o no. El tiempo que dura la recolección es crítico para la preparación de los componentes. En caso de que la venopunción haya sido difícil, traumática o que el tiempo de recolección de la sangre haya sido superior a doce minutos, coloque un esparadrapo por encima de la etiqueta de la bolsa : “No apta para concentrado de plaquetas, crioprecipitado o plasma fresco” Mezcle la sangre con el anticoagulante inmediatamente la sangre ingrese a la bolsa, mézclela permanentemente en forma manual o con agitador mecánico. La sangre que sale lentamente necesita más atención y se debe mezclar más veces ya que ésta tiende a formar coágulos. 7 CUIDADOS DESPUES DE LA DONACION Inspeccione el brazo para detectar si hay sangrado residual, si lo hay, haga nuevamente presión; si no lo hay, aplique una curita adhesiva. No haga fricción en el sitio de la venopunción porque se puede romper el coágulo y presentarse nuevamente sangrado. Haga sentar al donante lentamente, ayudándolo en toda ocasión. En caso de que se haga en silla, enderécelo : Obsérvelo y pregúntele si se siente bien NUNCA DEJE AL DONANTE SOLO SENTADO AL BORDE DE LA CAMILLA. Agradezca al donante. Pídale al donante que permanezca en la sala de donación por 15 minutos, bajo estricta observación y que no abandone el lugar hasta ser autorizado por el personal encargado. La mayoría de las reacciones ocurren durante el tiempo que el donante está en la sala de observación ingiriendo el refrigerio, por lo cual se debe tener gran precaución. Antes de retirarse de la sala de donación se le debe entregar al donante la hoja sobre recomendaciones postdonación

[Fecha] UAP

7

FLEBOTOMIA

 El T-ACE II+ es un extractor automatizado para los componentes de la sangre, que ofrece un proceso estandarizado de separación de la sangre centrifugada deacuerdo a las normas establecidas (GMP – BPM).  El equipo esta diseñado para ser utilizado con todos los sistemas de bolsas convencionales TB (Top & Bottom), TT (Top & Top o Top Side Flow) con o sin filtros incorporados.  Los protocolos utilizados permiten un gran rango de procesos de separación tanto primaria como secundaria (RBC,PRP,BC, etc). VENTAJAS  Calibración Automática de Balanzas, Detectores y posición de la prensa.  Display a Color: Demostración grafica a color que permite la observación de cada paso durante el proceso de separación.  Diseño Ergonomico: Cuenta con un sistema Telescopico de soporte para las bolsas de sangre.  Sistema Múltiple de Detección: Asegura que tanto las bolsas como la tubuladura estén colocadas de acuerdo al protocolo seleccionado.  Indicador de Operación: Cuenta con un sistema de señal óptica, puede ser observada a gran distancia.  Proceso Electrónicamente Controlado: Un microprocesador mide y supervisa las balanzas, los sensores y consecuentemente el flujo y peso de los fluidos garantizando la calidad de los componentes extraídos.  Sistema Seguro de Prensa: Protege al operador durante el proceso de extracción.

. Producción Laboral En El Área De Rotación CULTIVO Pacientes/ servicio

SECRECIÓN

SECRECIÓN

FARÍNGEA

VAGINAL

HEMOCULTIVO

CVC

Y

ESPUTO

CVP

[Fecha] UAP

CULTIVO

8

Hospitalización

10

24

144

52

6

Consultorios

130

120

48

00

30

Referidos

12

10

4

00

2

154

196

52

38

TOTAL MENSUAL 152

V. AREA ACADEMICA LECTURAS ACADEMICAS DADAS POR EL TUTOR  Antibiograma  Protocolos en hemocultivo CAPACITACIONES EXTERNAS  No se llevó ningún tipo de capitación externa.

VI. BIBLIOGRAFIA

1. Drew LW., Cockerill FR, Henry NK. In: Wilson Wr, Sande MA. Current. Diagnosis & treatment in infectious diseases. International Edition. United States: McGraw-Hill Companies; 2001. p. 43-64.

2. Engleberg NC. Principios diagnósticos. En Schaechter M, Medoff G, Eisenstein BI, Guerra H. Mecanismos de las enfermedades infecciosas. 2ª ed. Argentina: Editorial Médica Panamericana; 1994. p. 691-708.

3. Mims CA, Playfair JHL, Roitt IM, Wakelin D, Williams R, Anderson RM. Microbiología médica. España: Mosby/Doyma; 1995. p. 17.118.15.

4. Murray PR, Rosethal KS, Kobayashi GS, Pfaller MA. Microbiología médica. 4ª ed. España: Mosby Elsevier Science; 2002. p. 153-170. .

5. Podestá O, Sturba E, Casimir L. Métodos moleculares de diagnóstico y seguimiento. En Stamboulian D. Temas de

[Fecha] UAP

9

infectología clínica. Colombia McGraw-Hill Interamericana; 2002. p. 139-58.

VII.

CONCLUSIONES: 

El objeto material de la Microbiología viene delimitado por el tamaño de los seres que investiga, lo que supone que abarca una enorme heterogeneidad de tipos estructurales, funcionales y taxonómicos: desde partículas no celulares como los virus, viroides y priones, hasta organismos celulares tan diferentes como las bacterias, los protozoos y parte de las algas y de los hongos.



Por otro lado, la Microbiología también se ocupa de las distintas actividades microbianas en relación con los intereses humanos, tanto las que pueden acarrear consecuencias perjudiciales (y en este caso estudia los nichos ecológicos de los correspondientes agentes, sus modos de transmisión, los diversos aspectos de la microbiota patógena en sus interacciones con el hospedador, los mecanismos de defensa de éste, así como los métodos desarrollados para combatirlos y controlarlos), como de las que reportan beneficios (ocupádose del estudio de los procesos microbianos que suponen la obtención de materias primas o elaboradas, y de su modificación y mejora racional con vistas a su imbricación en los flujos productivos de las sociedades).

[Fecha] UAP

10

VIII. RECOMENDACIONES:

 Las pruebas de susceptibilidad a los antimicrobianos se deben realizar de acuerdo a normas internacionales y se deben someter a un riguroso Control de Calidad Interno y Externo.

 Un adecuado control de las infecciones hospitalarias requiere de una identificación bacteriana al nivel de “especie”. Una vez obtenidos los resultados de las pruebas de susceptibilidad se debe revisar la compatibilidad entre identificación y perfil de resistencia

 La interpretación de los resultados de las pruebas de susceptibilidad basados en la identificación de mecanismos de resistencia (y en el uso de “sistemas expertos” en los equipos automatizados) se debe realizar siempre bajo la supervisión de un Microbiólogo Clínico.

LIC.TM.EFRAIN MONTES Coordinador de Internado

[Fecha] UAP

11

INT.ALVAREZ CARDENAS TREISY Interno rotante por el área

ANEXOS

[Fecha] UAP

12

INCUBADORA PARA LA SIEMBRA DE MEDIOS PRIMARIOS

CULTIVO DE LAS DIFERENTES MUESTRAS EN MEDIOS PRIMARIOS PARA SU POSTERIOR IDENTIFICACI}O

[Fecha] UAP

13

[Fecha] UAP

14

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